|
Скачать 373.44 Kb.
|
Содержание
Материалы и методы исследования.Результаты исследования и их обсуждения |
Клинико-микробиологическая оценка эффективности эндоканального применения биоактивного геля Коллапан в лечении хронического периодонтита А.В. Митронин В.Н. Царев к.м.н., доцент д.м.н., профессор Кафедра факультетской терапевтической стоматологии МГМСУ Кафедра микробиологии, иммунологии и вирусологии МГМСУ, НИМСИ Проблема лечения верхушечного периодонтита является одной из важных и не полностью решенных задач терапевтической стоматологии. Это связано со значительной распространенностью этого заболевания, сложностью и трудоемкостью врачебных манипуляций, большим процентом неудач и осложнений при лечении, а также частым отсутствием стабильности результатов, полученных при использовании известных методов лечения. Этим объясняется актуальность проблемы периодонтита и постоянный поиск новых лекарственных средств и методов лечения периодонтита [3,9,17,22]. Кроме того, одонтогенный очаг часто ведет к прогрессированию инфекции, развитию общих очагово-обусловленных заболеваний, что делает эндодонтию одной из важнейших проблем стоматологии [4,20,26]. Развивающееся воспаление в периодонте как острое, так и хроническое при нормальной реактивности организма представляет защитную реакцию. Вместе с тем при нарушении иммунной системы изменяются защитные реакции и несмотря на правильно проведенное лечение возникает прогрессирование воспалительного процесса, и развиваются его осложнения [2,5,27]. В этой связи представляются важным разработка новых методов диагностики и прогрессивных программ местного и общего лечения больных с периодонтитом при учете патогенетических факторов в развитии и течении заболевания и профилактики осложнений, в том числе у больных с иммунной недостаточностью [10]. Лечение хронического периодонтита требует разработки новых технологий клинико-лабораторной диагностики с точки зрения этиологических факторов. Это позволит установить основные патогены и сопутствующие им микроорганизмы, участвующие при различных клинических проявлениях воспалительного процесса. Микробиологическая диагностика будет способствовать определению стратегии лекарственной терапии с избирательным выводом медикаментозных препаратов для санации системы корневых каналов и периапикального очага. Современные данные о роли облигатной анаэробной, смешанной бактериальной флоры околоверхушечных тканей в развитии воспалительного процесса в периодонте определяют необходимость поиска эффективных средств для проведения местной антибиотикотерапии в комплексном лечении заболевания [1,8,24]. Сведения о бактериологических показаниях к использованию антибиотиков при периодонтите немногочисленны [13,16,21], а для их применения в составе паст для пролонгированного антисептического действия отсутствуют. Местное использование антибиотиков, обладающих бактерицидным действием, диктуется данными о нередко возникающей токсичности при их пероральном приеме [6]. Нередко в терапии периодонтита отсутствует принцип индивидуального и комплексного подхода [8]. Практические врачи не всегда учитывают этиопатогенетические факторы воспалительного процесса в периодонте, которые связаны с нарушением иммунитета при сопутствующих заболеваниях [7,11,23,25], а вместе с тем, эмпирическое и безосновательное назначение и применение антибактериальных препаратов может быть неэффективным и способствует развитию резистентности к ним микроорганизмов. Осуществлению микробиологической диагностики и оценке роли отдельных видов бактерий в развитии неспецифических гнойно-воспалительных заболеваний челюстно-лицевой области способствует метод анаэробного культивирования. Однако, такая этиологическая диагностика является менее точной и крайне затруднительна из-за длительности данного исследования и не позволяет определить все виды бактерий, участвующих в развитии заболевания. Все это приводит к ошибкам в этиопатогенетической диагностике и в выборе метода лечения воспалительного процесса. В современных условиях микробиологической диагностики инфекционных заболеваний стало возможным использование более точных молекулярно-генетических технологий. Быстрота и высокая чувствительность, генодиагностики позволяет выявить единичные молекулы специфической ДНК-последовательности в течение нескольких часов, что способствует более эффективному решению задач в клинической диагностике [12,15,18]. Остается также открытым вопрос о выборе антибактериальных препаратов различных групп в составе эндоканальных паст для лечения периодонтита. Среди современных цефалоспоринов третьего поколения имеются антибиотики, обладающие выраженным антибактериальным и иммуномодулирующим действием, что является их существенным преимуществом и является весьма перспективным при лечении вяло текущих и хронических очагов инфекции [14,19]. Актуальным является разработка новых методов клинико-микробиологического контроля за околоверхушечными очагами деструкции, состояния костной ткани, минерализации в зависимости от антисептической обработки с учетом особенностей микрофлоры, пломбировочных материалов, применения стимуляторов остеогенеза. Целесообразна разработка показаний и оценка результатов по использованию остеоиндуктивного и остеокондуктивного препарата Коллапан, содержащего антибактериальные средства, в том числе цефалоспорины и линкозамиды, при лечении хронического периодонтита. Целью работы являлось эндоканальное применение отечественного гелеобразного препарата Коллапан в комплексном лечении больных с деструктивными формами хронического периодонтита и оценка его эффективности на основании данных клинического, культурального и молекулярно-генетического исследований. ^ Обследовано 69 пациентов (от 18 до 65 лет) в том числе 38 женщин и 31 мужчина у которых диагностированы деструктивные формы хронического периодонтита (хронический гранулирующий периодонтит – у 24 больных; хронический гранулематозный периодонтит – у 21 больных; радикулярная киста – у 11 больных; хронический деструктивный периодонтит в стадии обострения – у 13 больных). Всем больным наряду с клиническими методами обследования проводили культуральные и молекулярно-генетическое (ПЦР) исследования содержимого корневой системы зуба и периапикальной области. Для микробиологических исследований у больных с хроническим периодонтитом проводили забор материала из корневых каналов зубов (до применения химиотерапевтических препаратов) с помощью стерильного бумажного эндодонтического штифта стандартного размера (№ 30), который затем помещали в транспортную систему полужидкую питательную среду Амиеса и хранили при температуре 2-4°С. Дальнейшее культуральное исследование проводили в соответствии с общепринятыми правилами клинической анаэробной микробиологии. Исследование включало количественный секторальный посев на среды, предназначенные для культивирования бактерий полости рта в аэробных и анаэробных условиях. Чистые культуры облигатно-анаэробных и микроаэрофильных бактерий получали в анаэробных условиях, используя 5% кровяной агар, приготовленный на основе Columbia Agar фирмы Oxoid (с добавлением гемина -5 мкг/мл и менадиона - 0,1 мкг/мл). Посевы инкубировали в анаэростате с бескислородной газовой смесью, содержащей 80% азота, 10% водорода, 10% углекислого газа в течение 3-5 суток. Для редукции остатков кислорода использовали палладиевый катализатор. Идентификацию пяти вирулентных видов бактерий в корневом канале также осуществляли с помощью полимеразной цепной реакции (ПЦР). Методика исследований заключалась в следующем [18]: введение стерильного бумажного эндодонтического штифта в корневой канал так, чтобы исключить контакт со слизистой, поверхностью эмали или коронкой зуба; перенос бумажных штифтов в пробирки типа Eppendorf c физиологическим раствором и транспортировка их в лабораторию; выделение ДНК; проведение ПЦР; учет результатов с помощью обратной гибридизации или электрофореза в геле. Образцы исследуемого материала из корневых каналов в течение 1 часа доставляли в лабораторию кафедры микробиологии, иммунологии и вирусологии МГМСУ, проводящую молекулярно-генетические исследования. Для выделения ДНК из клинического материала использовали вариант ускоренной подготовки проб c помощью набора “Энзимикс” (ООО НПФ “ГЕНТЕХ”). Для амплификации маркерных фрагментов ДНК вирулентных бактерий Actinobacillus actinomycetemcommitans, Porphyromonas gingivalis, Prevotella intermedia, Bacteroides forsythus и Treponema denticola применяли метод мультиплексной ПЦР, позволяющей использовать одновременно 2 – 4 и более праймеров нескольких возбудителей, который осуществляли с помощью теста MicroDentR (Германия) и аналогичной отечественной системы, разработанной ООО НПФ “ГЕНТЕХ” и коллективом кафедры микробиологии, иммунологии и вирусологии МГМСУ. ПЦР проводили в амплификаторе “Терцик” (ЗАО “НПФ ДНК-Технология”, Москва) с компьютерной программой, разработанной изготовителями. Учет результатов проводили с помощью обратной гибридизации ДНК с генетическими маркерами исследуемых видов бактерий, нанесенных на нитроцеллюлозные полоски (MicroDentR ) или электрофореза в 1,5 % агарозном геле (ООО НПФ “ГЕНТЕХ”). Для обоснования выбора антибактериальных препаратов при лечении периодонтита проводили оценку чувствительности выделенных штаммов вирулентных бактерий к антибиотикам диффузным методом с применением способов «дисков» и «лунок» для гелевых лекарственных форм [19]. Лечение хронического периодонтита с применением Коллапана, содержащего различные антимикробные средства (цефатаксим, линкомицин, метронидазол), проведено у 54 пациентов. В стадии ремиссии заболевания после эндодонтической обработки канала и индивидуального подбора испытуемых антибактериальных средств на основании полученных данных микробиологических тестов препарат-гель вводили в корневой канал каналнаполнителем или с помощью гуттаперчевого штифта под герметичную временную пломбу из стеклоиономерного цемента на 7-14 дней. У 18 больных с периодонтитом использовали следующие гелевые формы препаратов: Коллапан-К (1 группа), у 18 больных – Коллапан-Л (2 группа), у 18 – Коллапан-М (3 группа), контрольной группой служили 15 больных у которых проводили традиционные методы эндоканальной обработки при лечении хронического периодонтита. Затем после 2-3 дней у контрольной группы больных, и через 7-14 дней у 1, 2 и 3 групп вновь проводили забор материала из корневого канала для микробиологической оценки. Пломбирование корневых каналов проводили гуттаперчевыми штифтами методом латеральной конденсации с силером до верхушки корня зуба с использованием рентген-контроля. Клиническую эффективность ближайших результатов оценивали по отсутствию болевого синдрома, гиперемии и отечности в области слизистой переходной складки, боли при накусывании. Полученный цифровой материал обрабатывали методами вариационной статистики с вычислением средней арифметической величины (М) и ошибки средней величины (м). На основании критерия Стьюдента (Т) и количества наблюдений в каждом эксперименте (n) рассчитывали вероятность различий (Р). За достоверную разницу принимали значения при Р<0,05. Статистическую значимость изменения частоты обнаружения вирулентных видов бактерий после лечения проводили, используя критерий Z, оценки доверительных интервалов для разности долей с помощью компьютерных программ “Биостатистика”. ^ При культуральном исследовании содержимого системы корневых каналов и периапикальной области с использованием техники анаэробного культивирования у каждого больного были выделены ассоциации разных видов бактерий (от 5 до 7 видов) с высокой частотой (более 50%) из исследуемого материала выделялись наиболее агрессивные виды патогенных бактерий: пептострептококки, бактероиды и актиномицеты и фузобактерии, в значительно меньшей степени встречались S.epidermidis и негемолитический стрептококк. При проведении молекулярно-генетического исследования (генодиагностики) этих материалов частота встречаемости данных видов бактерий существенно увеличивалась. Кроме того, такие виды, как B.forsythus и T. Denticola, при культуральном методе исследования вообще не выявлялись, тогда как методом ПЦР у обследуемых больных они выявлены в 49,5% случаев. Приемы генодиагностики, основанной на молекулярно-генетических технологиях идентификации вирулентных анаэробных бактерий в корневом канале с помощью ПЦР, использованы нами впервые в отечественной практике. Учитывая полученные результаты и данные литературы о роли указанных вирулентных бактерий в развитии воспалительных заболеваний периодонта, мы исследовали чувствительность к антибактериальным препаратам разных штаммов важнейших вирулентных бактерий, которые были выделены у больных. Анализ полученных результатов представлен в таблице 1. Среди препаратов, действие которых направлено преимущественно на более агрессивную грамотрицательную микрофлору, рассмотрены современные антибактериальные средства, которые применялись нами местно в составе эндоканальных паст: линкомицин (линкозамиды), цефотаксим (цефалоспорины). Как видно из представленных данных их активность не была ограничена грамотрицательной микрофлорой, но также распространялись и на грамположительную анаэробную флору. Результаты тестирования свидетельствовали о высокой чувствительности анаэробных бактерий к перечисленным цефалоспоринам и линкозамидам. Сравнительная оценка их действия не выявила достоверных различий. Таблица 1. Результаты исследования чувствительности вирулентных видов бактерий из корневого канала больных периодонтитом к химиотерапевтическим препаратам разных групп
Примечание. Чувствительность к препарату: SS – высокая (от 80 до 100% числа ингибированных штаммов), S – средняя (70-79%), V – вариабельная (50-69%), SR – чувствительны более половины штаммов, RS – резистентны более половины штаммов, R – низкая с преобладанием резистентных штаммов (21-49%), RR – высокая резистентность (до 20%). Данные, полученные при использовании указанных групп антибиотиков, сравнивали с результатами исследования активности в отношении анаэробных бактерий препарата метронидазола. Как видно из таблицы метронидазол вызывал гибель не более 80% штаммов анаэробных бактерий (за исключением представителей Peptostreptococcus и Fusobacterium). Однако уступал большинству макролидов, линкомицину, антибиотикам широкого спектра действия по активности в отношении пептострептококков, P.intermedia, Actinomyces spp., A.actinomycetemcommitans, Str.intermedius, Str.sanguis. Некоторые грамотрицательные виды - P.intermedia, P.gingivalis, а также анаэробные кокки и особенно актиномицеты, были чувствительны к метронидазолу, чем к гентамицину и препаратам пенициллинвого ряда. Таким образом, сравнивая спектр действия и активность антибактериальных препаратов разных групп, можно сформулировать бактериологические показания к выбору того или иного препарата для комплексного лечения периодонтита. У наблюдаемых пациентов с хроническими формами деструктивных периодонтитов в стадии обострения нами отмечена высокая обсемененность грамотрицательной и грамположительной анаэробной флорой (105 КОЕ и выше). Поэтому при лечении основными группами выбора должны быть макролиды, цефалоспорины и антибиотики линкомицинового ряда. Наряду со спектром действия, адекватного данной микрофлоре, их характеризует удобная пероральная форма, высокая биодоступность, всасываемость в кровь и накопление в очаге воспаления, хорошая переносимость большинством больных. Данные препараты можно применять также и местно при эндодонтическом лечении периодонтита в виде раствора или в составе официнальной пасты, предназначенной для трансканальной терапии деструктивных форм периодонтита. Вместе с тем, следует отметить, что при выделении преимущественно грамположительной облигатно-анаэробной флоры (пептострептококки) или наличии фузобактерий и бактероидов, микробиологически обосновано использование препарата метронидазол. По-видимому, применению метронидазола также показано, когда периодонтит сопровождает пародонтит. Вместе с тем наиболее агрессивная резидентная грамотрицательная микрофлора с участием A.actinomycetemcommitans, выделяемая при деструктивных формах хронического периодонтита в большом количестве (105-107 КоЕ). На основании данных микробиологического исследования у этих больных показано применение препаратов группы цефалоспоринов (цефотаксим) и линкозамидов (линкомицин). Целесообразно также назначение этих антибиотиков как местно, так и перорально при выделении актиномицетов, S.intermedius, S.sanguis. Несомненно, положительным фактором в этих случаях являются также и хорошие фармакокинетические характеристики цефалоспоринов и линкозамидов. Положительным клиническим решением в применении антимикробных препаратов данных групп в комплексном лечении хронического периодонтита стало появление на стоматологическом рынке отечественного материала Коллапан-гель (биоактивного костнопластического материала на основе однородной композиции особо чистого гидроксиапатита, коллагена специальной обработки и антимикробного средства), произведенного фирмой «Интермедапатит». Наличие в Коллапане антимикробных средств различного спектра действия позволяет целенаправленно выбрать лекарственную форму Коллапана, соответствующую выявленному виду патогенной микрофлоры. Для обоснования этого мы провели исследование чувствительности выделенных штаммов вирулентных бактерий к разным лекарственным формам Коллапан-гелей, отличающихся по содержащимся в них антимикробным компонентам (рис. 1). Результаты исследования, выполненного с применением способа диффузии в агар из лунок, содержащих Коллапан-гель и гидроксид Ca и физиологический раствор (для контроля), представлены в таблице 2. Таблица 2. Результаты исследования чувствительности вирулентных видов бактерий из корневого канала больных периодонтитом к химиотерапевтическим препаратам разных групп in vitro к лекартсвенным формам Колапана с антимикробными компонентами и гидроксиду кальция
Примечание. Чувствительность к препарату: SS – высокая (от 80 до 100% числа ингибированных штаммов), S – средняя (70-79%), V – вариабельная (50-69%), SR – чувствительны более половины штаммов, RS – резистентны более половины штаммов, R – низкая с преобладанием резистентных штаммов (21-49%), RR – высокая резистентность (до 20%). Среди представленных форм Коллапана мы, основываясь на выявлении вирулентных бактерий из системы корневого канала и области периодонта, а также чувствительности этих штаммов к антибактериальным препаратам, выбрали формы Коллапана, содержащие клафоран (цефотаксим), линкомицина гидрохлорид и метронидазол, соответственно. В контрольной группе больных с хроническим периодонтитом после традиционной хемо-механической обработки каналов, с последующей ирригацией физраствором и оставлением его под герметичную повязку временной герметичной пломбы на 2-3 дня, проводили микробиологические исследования содержимого корневой системы и периодонта. Так при культуральном исследовании были выявлены следующие результаты находок видов бактерий и их персистенции (табл. 3). Таблица 3. Сравнительная частота выявления вирулентных анаэробных бактерий из корневого канала с помощью культурального метода до и после лечения с использованием физиологического раствора (контрольная группа) (n = 15)
У 8 больных из 15 (53,3%) обнаружены A.аctinomycetemcommitans, у 9 (60%) - P.gingivalis, а после эндодонтической обработки их частота выявления снизилась до 26,6%, у 11 (73,3%) выявлена P.intermedia, а после – у 8 больных (53,3%). Такие виды, как B.forsythus и T.denticola данным методом не обнаружены, тогда как при генодиагностике эти виды бактерий в корневой системе контрольной группы больных были выявлены в 8 случаях из 15 (53,3%) B.forsythus и в 6 случаях (40%) – T.denticola, также чаще выявлялись: A.аctinomycetemcommitans (60%), P.intermedia (80%), P.gingivalis (73,3%). После традиционной эндодонтической обработки бактерии обнаружены с помощью ПЦР диагностики: A.аctinomycetemcommitans – в 40%; B.forsythus – в 33,3%; P.intermedia – в 46,6%; P.gingivalis – в 40%; T.denticola – в 26,6% (табл.4). Таблица 4. Сравнительная частота выявления вирулентных анаэробных бактерий из корневого канала с помощью ПЦР до и после лечения контрольной группы (физиологический раствор) (n = 15)
Все эти данные показывают, что традиционная эндодонтическая обработка корневых каналов является недостаточной для антисептического воздействия на патогенную агрессивную микрофлору корневых каналов и периапикального очага, имеющуюся при деструктивных формах хронического периодонтита. При клинической оценке леченных зубов после 2-3 дней нахождения физиологического раствора под временной пломбой больные контрольной группы отмечали боли при накусывании в 4-х случаях (26,7%), в том числе у одного больного зуб не выдержал герметичного закрытия (6,6%). Учитывая более точную и специфическую индикацию патогенных бактерий, содержащихся в корневых каналах при лечении периодонтита с использованием ПЦР, по сравнению с культуральным методом, дальнейшие микробиологические исследования с препаратом Коллапан, содержащим антимикробные средства мы проводили применяя генодиагностику (рис. 2). Особый интерес представляют микробиологические исследования содержимого системы корневых каналов, дентина, цемента и периапикальной области зубов с периодонтитом до и после применения технологии пролонгированного антисептического воздействия на них материала Коллапан с антибактериальными препаратами. При использовании молекулярно-генетического метода исследований частота выявления всех изучаемых видов бактерий после лечения была существенно снижена. Как видно из результатов микробиологической оценки персистенции вирулентных видов бактерии зарегистрированы в содержимом корневых каналов всех зубов с хроническим периодонтитом (табл. 5). Обсемененность микрофлорой выявлена высокой, а содержание A.actinomycetemcommitans – (52,8%) у 19 пациентов, B.forsythus – (47,2%) у 17, P.intermedia – (69,4%) у 25 пациентов, P.gingivalis – (44,4%) у 16 пациентов, T.denticola – (36,1%) у 13 пациентов. Таблица 5. Сравнительная частота выявлению вирулентных анаэробных бактерий из корневых каналов с помощью ПЦР до и после лечения препаратами Коллапан-К, Л (n = 36)
После удаления из корневых каналов материала Коллапан с клафораном и с линкомицином через 7 и 14 дней наблюдалась иная картина маркерной ДНК вирулентных патогенов; B.forsythus, P.gingivalis и T.denticola не выявлялись. У одного пациента выделена A.actinomycetemcommitans через 7 дней после лечения с применением Коллапан-Л, а после 14 дней уже не выявлялась. И только P.intermedia выявлена в 2-х случаях после лечения через 7 дней (1 – Коллапан-К и 1 – Коллапан-Л) и у одного больного через 14 дней после лечения с Коллапан-Л. Результаты единичных находок объединены для Коллапана-К и Коллапана-Л, т.к. они не имеют существенных различий. А исследования, проводимые с препаратом Коллапан-М отличаются от данных микробиологической оценки после лечения препаратами Коллапан с клафораном и линкомицином. Сравнительная частота генодиагностики после лечения препаратом Коллапан-М, хотя и показала снижение выявленых ДНК вирулентных бактерий, но в сравнении с другими исследованными композициями препарата Коллапан отмечена меньшая антибактериальная эффективность (табл. 6). Таблица 6. Сравнительная частота выявлению вирулентных анаэробных бактерий из корневых каналов с помощью ПЦР до и после лечения препаратами Коллапан-М (n = 18)
* достоверные различия по сравнению с контролем до лечения Р0,05 В целом частота выделелния бактериальных штаммов у больных после лечения уменьшилась: A.actinomycetemcommitans – на 45,1% через 7 дней и на 50,7% через 14 дней; B.forsythus – на 38,9% и 44,5%; P.intermedia – на 58,4% и 63,9%; P.gingivalis – на 38,2% через 7 дней и через 14 дней не выявлено; T.denticola – на 26,4% и 17,5%. Данные виды бактерий обнаружены у 2-х больных. При подробном анализе анамнестических данных оказалось, что эти пациенты ранее принимали курс лечения метронидазолом per os для лечения сопутствующего заболевания мочеполовой системы. В этой связи становится объяснимым устойчивость к препарату значительной части микробной флоры. Поэтому у этих пациентов в последствии Коллапан-М заменен другой композицией – Коллапан-К. При анализе клинической картины в ближайшие сроки после лечения установлено, что боли при накусывании были у 11,1% больных. Других видов периодонтальной реакции не отмечено. Клиническое обследование больных, кторым для заполнения корневых каналов зубов с деструктивными формами хронического периодонтита с применениями Коллапан-К и Коллапан-Л, показало наиболее благоприятные результаты. Так в группе больных, где использовался Коллапан-К пациенты каких-либо беспокоящих их симптомов не отмечали, и только один пациент (5,5%) отметил болезненность при накусывании на зуб, который эндодонтически лечился с использованием препарата Коллапан-Л. Таким образом, локальное равномерное пролонгированное выделение антимикробного средства (до 20 суток) в патологическом очаге позволяет обеспечить высокий клинический эффект в лечении деструктивных форм хронического периодонтита. Сравнительная клинико-микробиологическая оценка эффективности применения Коллапан-геля для эндоканального лечения хронического периодонтита с изучением влияния различных лекарственных форм для пролонгированного действия выявиля достоверно выраженный антимикробный эффект, особенно против представителей грамотрицательной вирулентной анаэробной флоры (рис. 3). У больных контрольной группы вирулентные виды бактерий с помощью ПЦР выявлялись в 61,3%. После традиционной эндодонтической обработки корневых каналов и их ирригации физиологическим раствором через 2-3 дня после удаления временной пломбы и взятия материала из корневых каналов на исследование эти виды бактерий вновь выявлены в 37,3%. У больных 1 и 2 группы обсемененность микрофлорой корневой системы зубов составила в среднем – 50%, третьей группы – 52,5%. Такое различие среднего количественного показателя обсемененности, на наш взгляд объясняется выявлением у больных различного клинического течения деструктивных форм хронического периодонтита и индивидуальной иммунологической реактивностью организма. После применения эндоканального лечения зубов с периодонтитом микробиологическая картина изменилась. Так через 7 дней и 14 дней после нахождения в канале препарата Коллапан - К и Л вирулентная микрофлора составила всего 1,6% и 0,6% находок. А при воздействии Коллапана-М вирулентная микрофлора из корневых каналов выявлялось чаще – 11,8% и 5,4%, соответственно. Следует отметить эффективность исследованных препаратов, однако наиболее широкий спектр действия выявлен у цефалоспоринов и линкозамидов. Клинические исследования в ближайшие сроки эндоканального применения испытуемых лекарственных препаратов показали следующую картину (рис. 4). Из представленной диаграммы видно, что периапикальные реакции в контрольной группе отмечены больными в 26,7% случаев. При использовании гелеобразного Коллапана-К (цефотаксим) – клинической периапикальной реакции у обследуемых больных не отмечалось. Наименьший процент реакции местных тканей периодонта на постэндоканальное воздействие форма Коллапан-Л – 5,5% реакций. У больных при эндоканальном лечении с применением формы Коллапан-М выявлено – 11,1% реакций. Следует заключить, что после применения вышеуказанных антибактериальных препаратов на этапах антисептического эндодонтического лечения хронического периодонтита в составе Коллапан гелей для пролонгированного лечебного воздействия на систему корневого канала и периодонтальные ткани, в зависимости от выработанной схемы и программы их применения, удаляли из каналов с последующей их постоянной обтурацией гуттаперчей с корневыми герметиками. Диспансерные наблюдения леченных зубов с применением Коллапан-гелей у пациентов показало эффективность методики лечения по данным клинико-рентгенологического контроля (Рис. 5, 6,7). Таким образом, нам удалось реализовать принцип этиологической диагностики в рамках обследования больных с хроническим верхушечным периодонтитом. Проведенные исследования позволяют обосновать целесообразность и прогнозировать высокую клиническую эффективность применения технологии отсроченного лечения заболевания с применением биоактивного материала Коллапан, содержащего антибактериальные средства. Литература
![]() Рисунок 1. Результаты определения чувствительности клинического штамма Prevotella intermedia к Коллапан-гелю с различными антибактериальными компонентами: 1 – Цефотаксин (Клафоран), 2 – Гидроксид кальция, 3 – Линкомицина гидрохлорид, 4 – Гентамицина сульфат, 5 – Метронидазол, 6 – Рифампицин.
![]() P.i. (1000) B.f. (747) T.d. (512) A.ac. (360) P.g. (197) Рисунок 2. Электрофореграмма результатов мультиплексной ПЦР. К – размеры ПЦР-продуктов (число пар нуклеотидов). 1 – 20 – исследуемые пробы. ![]() Рисунок 3. Динамика частоты выделения представителей микрофлоры системы корневого канала при хроническом периодонтите и его лечении разными лекарственными препаратами ![]() Рисунок 4. Сравнительная характеристика периапикальных реакций в ближайшие сроки после лечения ![]() ![]() Рис. 5 а,б. Хронический гранулирующий периодонтит 23,25,26 зубов а - до лечения, б – через 3 месяца после лечения с применением геля Коллапан-М ![]() ![]() Рис. 6 а,б. Радикулярная киста 37 зуба а - до лечения, б – через 4 месяца после лечения с применением геля Коллапан-К ![]() ![]() Рис. 7 а,б. Радикулярная киста 37 зуба а - до лечения, б – через 2 месяца после лечения с применением геля Коллапан-Л |