Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей





Скачать 373.11 Kb.
Название Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей
К.А. Лукманова
Дата 03.04.2013
Размер 373.11 Kb.
Тип Автореферат
На правах рукописи


ХИСАМОВА

НАЗИЛЯ ФАГИЛЬЕВНА


ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ РЕАКТИВНОСТЬ, ПЛОИДНОСТЬ И

КИНЕТИКА КЛЕТОЧНОГО ЦИКЛА КЛЕТОК ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ПРИ РАЗЛИЧНЫХ ПАТОЛОГИЧЕСКИХ СОСТОЯНИЯХ

У ДЕТЕЙ


14.00.36 – аллергология и иммунология


АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание учёной степени

кандидата медицинских наук


УФА - 2009


Работа выполнена в Государственном учреждении здравоохранения «Республиканская детская клиническая больница»


^ Научный руководитель- доктор медицинских наук, профессор

Хайруллина Раиса Масгутовна


Официальные оппоненты: доктор медицинских наук, профессор

Теплова Светлана Николаевна

доктор медицинских наук,

Азнабаева Лиля Фаритовна


^ Ведущая организация - ГОУ ВПО «Санкт-Петербургский государственный медицинский университет им. академика И.П.Павлова» Росздрава


Защита диссертации состоится « ___ » марта 2009 года в .…..часов на заседании Объединенного совета по защите докторских и кандидатских диссертаций ДМ 208.006.05 при ГОУ ВПО «Башкирский государственный медицинский университет» Росздрава по адресу: 450000, г. Уфа, ул. Ленина, 3.


С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке ГОУ ВПО «Башкирский государственный медицинский университет» Росздрава, по адресу: 450000, г. Уфа, ул. Ленина, 3.

Автореферат разослан «____» февраля 2009г.


Учёный секретарь

диссертационного совета К.А. Лукманова


^ ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ


Актуальность проблемы

Перспективным направлением клинической иммунологии является комплексный подход к изучению процессов, протекающих в иммунокомпетентных клетках и характеристика взаимосвязей между различными звеньями системы иммунитета. Физиологическое состояние клеток и способность к осуществлению присущих им функций характеризуется, в частности, уровнем ДНК (плоидностью) и показателями кинетики клеточного цикла. Для объективной оценки этих параметров широкое распространение получает проточная цитофлуориметрия, разделом которой является ДНК-цитометрия [Saha I. et al., 2000]. По прогнозам специалистов [Шмаров Д.А., Козинец Г.И., 2004], в самом ближайшем будущем можно ожидать внедрения проточной ДНК-цитометрии в практику работы клинико-диагностических лабораторий.

Согласно консенсусу по стандартизации методов проточной цитометрии, созданному по инициативе Совета Европейского Общества Целлюлярной Аналитической Патологии, материалом для определения плоидности клеток и кинетики клеточного цикла могут быть клетки крови, костный мозг, хирургические биоптаты, жидкости тела [Ormerod M.G., Tribukait B., 2001].

К настоящему времени большое количество научных работ посвящено изучению плоидности и кинетики клеточного цикла в биоптатах органов и тканей [Rytwiński K. et al., 1999, 2000; Tsuji Y. et al., 2000; García-Escudero A. et al., 2001; Both C.T. et al., 2001; Wnuk A. et al., 2001; Takes R.P. et al., 2002; Driemel O. et al., 2005].

Наряду с ДНК-цитометрией биоптатов, развивается направление, включающее оценку функционального состояния иммунной системы с использованием качественных параметров клеток, участвующих в иммунном ответе. Так, методом проточной ДНК-цитометрии исследовали функциональное состояние иммунокомпетентных клеток и пролиферативную активность лимфоцитов цельной крови при сочетанной травме. В условиях инкубации с митогенами и специфическими антигенами, было установлено угнетение функции лимфоцитов в первые дни и восстановление пролиферативной активности к четвёртой неделе после травмы [Бычкова Н.В. и др., 2004].

В методическом плане наименьшие сложности возникают при работе с периферической кровью, но исследования в этой области носят фрагментарный характер и в литературе отражены результаты ДНК-цитометрии клеток периферической крови лишь в условиях профессионального длительного радиационного воздействия [Ястребов А.П., Сазонов С.В., 1995].

В отделении клинической иммунологии Республиканской детской клинической больницы с 2002 года внедрено в практику изучение иммунного статуса и функционального состояния клеток на проточном цитофлуориметре, включающее ДНК-цитометрию клеток периферической крови. Комплексные исследования проводятся при хронических инфекционно-воспалительных процессах, новообразованиях, хронических гломерулонефритах на фоне иммуносупрессии, врождённых пороках развития - состояниях, оказывающих влияние на уровень ДНК и клеточный цикл.

Несмотря на преимущества проточной цитометрии (высокая точность, быстрота анализа), множество вопросов возникает при изучении функциональной активности клеток периферической крови и особенно процессов пролиферации. В связи с этим, актуальным является определение роли и места проточной ДНК-цитометрии в диагностике и прогнозе различных патологических состояний в педиатрической практике.

^ Цель исследования

Определить диагностическое и прогностическое значение ДНК-цитометрии периферической крови в комплексной оценке иммунного статуса и функционального состояния клеток при различных патологических состояниях у детей.

^ Задачи исследования

1 Провести клинико-иммунологическое обследование, ДНК-цитометрию клеток периферической крови у здоровых детей, определить корреляционные взаимосвязи между изучаемыми параметрами.

2 Оценить иммунологическую реактивность у детей с врождёнными пороками развития мочеполовой системы, хроническими гломерулонефритами, опухолями головного мозга и острыми лейкозами.

3 Методом ДНК-цитометрии охарактеризовать плоидность и кинетику клеточного цикла клеток периферической крови у детей с врождёнными пороками развития мочеполовой системы, хроническими гломерулонефритами, опухолями головного мозга и острыми лейкозами.

4 Оценить корреляционные взаимосвязи между параметрами, характеризующими иммунный статус и показателями ДНК-цитометрии клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей.

^ Научная новизна

Впервые дана характеристика плоидности и кинетики клеточного цикла клеток периферической крови методом проточной ДНК-цитометрии и установлена взаимозависимость между иммунологическими параметрами, показателями ДНК-гистограмм у практически здоровых детей, при хронических инфекционно-воспалительных процессах на фоне врожденных пороков развития мочеполовой системы и хронических гломерулонефритов, иммуносупрессивной терапии, при опухолевой трансформации.

^ Научно-практическая значимость работы

Определены области применения ДНК - цитометрии клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей в качестве показателей:

  1. выраженности деструктивно-дистрофических изменений в почках при хронической почечной недостаточности на фоне врождённых пороков развития мочеполовой системы;

  2. степени активности процесса и эффективности иммуносупрессии при хроническом гломерулонефрите;

  3. агрессивности течения заболевания при острых лейкозах.

Установлены особенности иммунологической реактивности, проявляющиеся у здоровых детей активацией, а при хронических инфекционно-воспалительных процессах супрессией клеточных эффекторных механизмов иммунной защиты, которые необходимо учитывать при разработке адаптационных норм и назначении иммунокоррекции.

^ Внедрение результатов исследования в практику

Материалы комплексных исследований, включающих показатели ДНК-цитометрии клеток периферической крови и иммунного статуса, используются в работе отделений клинической иммунологии, нефрологии, урологии, онкогематологии, нейрохирургии, отделении гемодиализа и трансплантации почки Республиканской детской клинической больницы, на циклах повышения квалификации врачей клинической лабораторной диагностики Института последипломного образования Башкирского государственного медицинского университета.

^ Основные положения, выносимые на защиту

1 ДНК-гистограммы клеток периферической крови практически здоровых детей соответствуют диплоидному содержанию ДНК. Основная масса клеток находится в G1 фазе клеточного цикла. Иммунный статус характеризуется высоким уровнем цитотоксических Т-лимфоцитов и естественных киллерных клеток.

2 При врождённых пороках развития мочеполовой системы у детей развивается комплекс иммунопатологических реакций в виде депрессии показателей противовирусной защиты (CD8+; CD16+56+), высокого содержания циркулирующих иммунных комплексов. Компенсированная стадия хронической почечной недостаточности характеризуется диплоидным типом гистограмм, в терминальной стадии выявляется анеуплоидия.

3 Иммунологическая реактивность у больных хроническим гломерулонефритом характеризуется снижением уровня естественных киллерных клеток, высоким содержанием клеток, несущих маркёры активации (CD25+) и циркулирующих иммунных комплексов. При хроническом гломерулонефрите на фоне базисной терапии отмечаются достоверные различия с контрольной группой по показателям кинетики клеточного цикла (фазы пролиферации).

4 К особенностям иммунологической реактивности при опухолях головного мозга относится высокое содержание в крови В-лимфоцитов и клеток, несущих маркеры ранней активации (CD25+), при остром В-лимфобластном лейкозе - В-лимфоцитоз. Доброкачественные и злокачественные новообразования головного мозга характеризуются диплоидным типом гистограмм, анеуплоидия выявляется при остром В-лимфобластном лейкозе.

5 Корреляционным анализом взаимосвязей между параметрами иммунного статуса и показателями ДНК-цитометрии установлены различные типы межклеточной кооперации.


^ Апробация работы

Основные положения диссертации обсуждены на научно-практической конференции «Педиатрия в Приволжском Федеральном Округе» (Казань, 2004); научно-практической конференции «Дни иммунологии в Санкт-Петербурге», (СПб., 2007); Всероссийской научно-практической конференции «Современные аспекты оказания стационарной медицинской помощи детям, новые технологии специализированной медицинской помощи. Роль стационарных детских учреждений в выполнении федеральных программ» (Уфа, 2007).

Апробация диссертации проведена на расширенном межкафедральном заседании кафедр лабораторной диагностики ИПО, педиатрии и детской хирургии ИПО, госпитальной педиатрии с курсом поликлинической педиатрии, детской хирургии, ортопедии и анестезиологии ГОУ ВПО «Башкирский государственный медицинский университет» Росздрава (протокол № 1 от 11.12.2008), на заседании Объединенного совета ДМ 208.006.05 (протокол №1 от 29.01.2009).

Публикации

По материалам диссертации опубликовано 6 научных работ, в том числе 3 в изданиях журналов, рекомендованных ВАК.

Объём и структура диссертации

Диссертация изложена на 123 страницах компьютерного текста и состоит из обзора литературы, пяти глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций. Работа содержит 28 таблиц, 25 рисунков. Список литературы включает 204 источников (106 отечественных и 98 иностранных авторов).


^ СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Материалы и методы исследования

Работа выполнена на базе отделения клинической иммунологии Республиканской детской клинической больницы (г. Уфа).

В соответствии с поставленной целью и задачами исследования проводили в несколько этапов. На первом этапе осуществляли клинико-лабораторное обследование практически здоровых детей (контрольная группа, n=30), отвечавших следующим требованиям [Хайруллина Р.М., 1999]:

- отсутствие жалоб на нарушения состояния здоровья в момент осмотра;

- эпизоды вирусных заболеваний не более 4 раз в течение года;

- отсутствие признаков аллергии и другой хронической патологии.

Следующим этапом работы было комплексное клинико-лабораторное обследование 84 детей с различными нозологическими формами заболеваний:

- врожденные пороки развития мочеполовой системы (ВПРМПС), осложненные пиелонефритом и хронической почечной недостаточностью различной степени тяжести: двухсторонний мегауретер (n=10), гипоплазия (n=5), поликистоз (n=4) или удвоение почек (n=4);

- хронический гломерулонефрит (ХГН) (нефротическая и смешанная формы) с начальными признаками нарушений детоксицирующей и выделительной функции почек. Обследование пациентов (n=20) проводили на фоне базисной терапии ХГН, включающей прием гормонов (преднизолон) и цитостатиков (хлорбутин, азатиаприн), механизм иммуносупрессивного действия которых связан с влиянием на пролиферативную фазу иммунного ответа [Цыгин А.Н., Сергеева Т.В., 1998];

- опухоли головного мозга: 10 больных с доброкачественными (краниофарингеома, зрелая тератома), 12 - со злокачественными новообразованиями головного мозга (опухоль лобной доли, III желудочка, медуллобластома, саркома, астроцитома, диффузная глиома ствола мозга). Клинико-иммунологическое обследование проводили до удаления массива опухоли. Злокачественный характер опухоли подтверждался результатами гистологических исследований;

- острые лейкозы: 16 больных с острым В-лимфобластным лейкозом (В-ОЛЛ), 3 – с острым миелобластным лейкозом (ОМЛ); обследование проводили в день постановки диагноза до назначения соответствующей терапии.

Комплексное обследование больных включало сбор анамнеза, анализ клинических данных, проведение лабораторных исследований. Иммунологическое обследование проводилось с использованием комплекса стандартизированных тестов, включающих оценку:

- клеточного звена иммунитета на проточном цитофлуориметре FACSCalibur с программным обеспечением SimulSet c использованием моноклональных антител фирмы Becton Dickinson и определением относительного содержания основных популяций и субпопуляций иммунокомпетентных клеток (CD3+, CD4+, CD8+, CD16+56+, CD19+, CD25+, CD95+, HLA-DR+);

- плоидности и кинетики клеточного цикла клеток периферической крови методом проточной ДНК - цитометрии, основанным на связывании ДНК с флуоресцентным зондом - пропидиума йодидом, который позволяет определить долю клеток в различных фазах митотического цикла (G0/1, S и G2+M). Образцы (не менее 20 000 клеток) анализировали на проточном цитофлуориметре, оборудованном модулем дискриминации дуплетов в программе ModFit;

- концентрации сывороточных иммуноглобулинов классов А, М, G (Ig A, Ig М, Ig G) определяемых методом радиальной иммунодиффузии в геле [Manchini G. et al.,1965];

- уровня циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК) осаждением полиэтиленгликолем (мол. масса –6000) [Имельбаева Э.А. и др., 2006].

Статистическую обработку результатов исследования проводили в операционной среде «Windows-XP» с использованием современных пакетов прикладных программ «STATISTICA 6.0». Для показателей, имеющих нормальное распределение признака, вычислялись среднее арифметическое значение (М) и стандартная ошибка среднего значения (m). Для показателей, не имеющих нормального распределения, вычислялись медиана и интеркартильный размах (25 - 75 перцентили). Достоверность различий оценивалась по критерию Манна-Уитни. Корреляционный анализ выполнялся по методу Спирмена с определением коэффициента ранговой корреляции (rs). Значения р 0,05 приняты статистически значимыми [Гланц С., 1999].


^ Результаты исследования и обсуждение

Показатели иммунологической реактивности и ДНК-цитометрии клеток периферической крови у здоровых детей и при различных патологических состояниях.

Изучение особенностей иммунологической реактивности при различных патологических состояниях невозможно без чёткого представления о норме. Нормативные показатели для каждого региона формируются при воздействии на организм человека различных внешних факторов. Изучение особенностей иммунологической реактивности практически здоровых детей проводилось в сравнении с нормативными показателями по РФ [Луговская С.А., Морозова В.Т., 2006] (табл. 1).


Таблица 1 - Иммунологические показатели практически здоровых детей


Показатели

Контрольная группа,

Mm (n=30)

Средние показатели по РФ, Mm

Ig A, (г/л)

1,010,12

1,46 0,38

Ig M,(г/л)

1,260,21

1,04 0,46

Ig G,(г/л)

10,680,57*

12,20 0,27

ЦИК, у.е.

29,242,50

До 50 у.е.

CD3+ (%)

62,101,31

64,00 1,20

CD4+ (%)

37,431,26

38,50 0,75

CD8+ (%)

37,051,53*

31,500,85

CD19+ (%)

14,760,90*

12,00 0,60

CD16+56+ (%)

22,101,73*

14,00 0,50

HLA-DR+ (%)

9,900,87*

14,00 0,80

CD25+ (%)

16,840,90*

9,00 0,90

CD95+ (%)

28,503,67

Нет данных

CD4+/CD8+

1,060,07*

1,35 0,04

*- различие статистически значимо (р0,05)

Клеточное звено иммунитета у детей контрольной группы характеризовалось высоким уровнем содержания эффекторных клеток: цитотоксических Т-лимфоцитов (CD8+), естественных киллерных клеток (CD16+56+), а также повышенным количеством клеток, несущих маркёры ранней активации (CD25+).

При сравнительной оценке состояния гуморального звена иммунитета в сыворотке крови у здоровых детей было выявлено снижение уровня Ig G. Перечисленные различия, очевидно, являются отражением адаптационных особенностей иммунологической реактивности.

Наряду с клинико-иммунологическими исследованиями, у детей контрольной группы была проведена ДНК - цитометрия клеток периферической крови. Как следует из таблицы 2, в 100% случаев выявлялся диплоидный тип гистограмм, причём основная масса клеток (99,860,02%) находилась в G0/1-фазе клеточного цикла, т.е. на стадии реализации присущих клетке функций в интересах ткани и организма в целом [Мазурик В.К., 2001].

^

Таблица 2 - Распределение клеток периферической крови по

плоидности и фазам клеточного цикла у здоровых детей (n=30)





Фазы клет.

цикла

Группа

Плоидность клеток


G0/1-фаза клеточного цикла

G2-фаза клеточного цикла

S-фаза клеточного цикла

CV


Контр.группа

Mm , %

100

99,86

0,02

0,04

0,01

0,1

0,01

2,480,09


Доля клеток в стадии синтеза ДНК (S-фаза) составляла 0,10,01%, в фазе G2-М - 0,040,01%. На рисунке 1 представлена типичная гистограмма распределения популяции клеток (46XY) по содержанию ДНК, позволяющая идентифицировать клетки в фазах G0/1 (диплоидные), S (в стадии синтеза ДНК) и G2+М (тетраплоидные и в стадии митоза).




Рисунок 1 - Гистограмма распределения клеток по фазам клеточного цикла в

контрольной группе.

Одним из основных направлений работы было изучение взаимного влияния иммунных механизмов и функционального состояния клеток периферической крови на клинической модели инфекционно-воспалительного процесса при врождённых пороках развития, хронических гломерулонефритах на фоне иммуносупрессии и опухолевой трансформации.

В последние годы в Республике Башкортостан отмечается тенденция к увеличению числа детей, родившихся с пороками развития МПС [Мурзабаева С.Ш., Марданова А.К., и др., 2005]. Учитывая актуальность проблемы, проведено комплексное клинико-иммунологическое обследование больных с различными пороками развития почек и мочевых путей, осложненных пиелонефритом и хронической почечной недостаточностью (ХПН) различной степени тяжести. Согласно классификации Н.А Лопаткина и И.Н. Кучинского (2007) и на основании клинического течения заболевания было выделено две подгруппы детей: у пациентов первой подгруппы была установлена интермитирующая и терминальная стадии ХПН, во 2-ой – латентная и компенсированная.

По данным ДНК-цитометрии, в первой подгруппе была выявлена анеуплоидия клеток периферической крови: 40,96% клеток были анеуплоидными, 52,64%- диплоидными. Во второй подгруппе гистограммы характеризовались диплоидным типом (таблица 3).


Таблица 3 - Распределение клеток периферической крови у детей с

врождёнными пороками развития МПС по плоидности и фазам

клеточного цикла

Плоидность и фазы клеточного цикла

Контрольная группа

(n= 30), Ме

1-ая подгруппа

(n= 12), Мe

2-ая подгруппа

(n= 11), Ме

Диплоидные %

100

52,64 (2,70-65,97)

100

G0/1 %

99,89

(99,83-99,90)

94,31**

(74,26-99,97)

99,02**

(97,74-99,70)

G2 %

0,02

(0,00-0,04)

0,02

(0,00-8,00)

0,00

(0,00-0,05)

S %

0,10

(0,09-0,11)

5,70**

(0,22-10,94)

0,76**

(0,25-2,26)

CV

2,57

(2,29-2,83)

4,38*

(3,03-6,71)

5,67*

(7,59-7,11)

Анеуплоидные %

0

40,96 (24,16-95,30)

0

G0/1 %

0

99,67 (97,86-99,87)

0

G2 %

0

0,00 (0,00-0,04)

0

S %

0

0,29 (0,00-2,10)

0

CV

0

4,29 (3,78-5,52)

0

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,01)


При изучении кинетики клеточного цикла было установлено, что основная масса клеток у детей с врождёнными пороками развития МПС находилась в G0/1-фазе клеточного цикла. Пролиферативная активность клеток периферической крови превышала показатели контрольной группы. Так, при диплоидном типе гистограмм доля клеток в S-фазе составила 0,76%, при гиперплоидии - 5,70%. Дети обеих подгрупп на момент обследования не принимали химиопрепараты, способные повлиять на клеточный цикл. Можно предположить, что митогенами для клеток являлись инфекционные агенты.

В таблице 4 приведены данные иммунологических показателей у детей обеих подгрупп.


Таблица 4 - Сравнительная характеристика иммунологических показателей у детей с врождёнными пороками развития мочеполовой системы


Показатели

Контрольная группа

(n=30)

1-ая подгруппа

(n=12)

2-ая подгруппа

(n=11)

Ig A, (г/л)

0,86 (0,75-1,09)

0,90 (0,68-1,98)

1,52 (0,93-2,3)

Ig M,(г/л)

0,91 (0,70-1,44)

1,00 (0,88-1,03)

1,46 (0,78-2,08)

Ig G,(г/л)

10,00

(9,00-12,50)

10,00

(8,50-11,00)

16,00

(11,50-20,90)

ЦИК, у. е.

31,00

(25,00-35,00)

38,00

(34,00-96,00)

41,00*

(37,00-46,00)

CD3+ (%)

62,00

(58,00-67,00)

68,00

(65,00-71,00)

77,00*

(66,00-80,00)

CD4+ (%)

38,00

(33,00-39,00)

38,00

(37,00-40,00)

48,00

(44,00-53,00)

CD8+ (%)

37,00

(31,00-41,00)

28,50**

(25,00-32,00)

26,00**

(25,00-28,00)

CD19+ (%)

15,00

(12,00-17,00)

12,00

(11,00-15,00)

12,00

(10,00-13,00)

CD16+56+ (%)

22,00

(18,00-28,00)

9,50**

(6,00-13,00)

12,00*

(10,00-12,00)

HLA-DR+ (%)

9,00

(7,00-12,00)

9,00

(7,00-11,00)

9,00

(8,00-10,00)

CD25+ (%)

17,00

(15,00-20,00)

13,50

(8,00-18,00)

11,00

(9,00-14,00)

CD4+/CD8+

1,00

(0,85-1,20)

1,38*

(1,20-1,58)

2,00**

(1,71-2,04)

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,01)


В результате сравнительного анализа выявлены однотипные иммунопатологические реакции, а именно: увеличение содержания ЦИК, повышение значений иммунорегуляторного индекса (CD4+/CD8+), низкий уровень цитотоксических Т-лимфоцитов (CD8+), естественных киллерных клеток (CD16+56+).

На рисунке 2 представлена гистограмма больного Л. с диагнозом: Нейромышечная дисплазия мочевой системы. Двухсторонний нерефлексирующий мегауретер. Хронический пиелонефрит. Ренальная гипертензия. ХПН, терминальная стадия.







Рисунок 2 - ДНК- гистограмма клеток периферической крови больного Л.


Таким образом, у детей с врожденными пороками развития в терминальной стадии хронической почечной недостаточности, выявлялась анеуплоидия клеток периферической крови. После билатеральной нефрэктомии, в отдельных случаях, отмечалась трансформация анеуплоидного типа гистограмм в диплоидный. Возможно, одной из причин выявленного транзиторного изменения плоидности клеток, являлась деструкция почечной ткани, так как проведенными ранее морфологическими исследованиями было установлено наличие деструктивно- дистрофических нарушений в интерстиции почек в терминальной стадии ХПН при врождённых пороках мочеполовой системы [Казанская И.В., 1987].

Важную роль в патогенезе хронических гломерулонефритов играют аутоиммунные и иммунокомплексные процессы. В связи с этим, одной из актуальных проблем детской нефрологии является оценка эффективности иммуносупрессии как необходимого элемента базисной терапии.

ДНК- гистограммы периферической крови у детей с хроническим гломерулонефритом в 100% случаях характеризовались диплоидным набором хромосом (таблица 5).


Таблица 5 - Распределение клеток периферической крови по плоидности и фазам клеточного цикла у детей с хроническим гломерулонефритом


Плоидность и фазы клеточного цикла

Контрольная группа

(n= 30), Ме

Дети с ХГН

(n= 20), Ме

Диплоидные %

100

100

G0/1 %

99,89 (99,83-99,90)

99,77 (99,32-99,83) **

G2 %

0,02 (0,00-0,04)

0,09 (0,04-0,16) **

S %

0,10 (0,09-0,11)

0,15 (0,09-0,37) *

CV %

2,57 (2,29-2,83)

3,06 (2,38-3,84) **

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,01)


Различия отмечались во всех фазах клеточного цикла, но наиболее значимыми они были в фазах пролиферации (S+G2/M), несмотря на то, что дети получали базисную иммуносупрессивную терапию.

Показатели иммунного статуса характеризовались увеличением количества общих Т-лимфоцитов (CD3+ клеток), высоким уровнем маркёра ранней активации (CD25+), низким содержанием иммуноглобулинов класса G, естественных киллерных клеток (CD16+56+) (таблица 6).


Таблица 6 - Характеристика иммунологических показателей у детей с хроническими гломерулонефритами


Показатели

Контрольная группа

(n=30)

Дети с ХГН

(n=20)

Ig A, (г/л)

0,86 (0,75-1,09)

1,13 (0,86-1,55)

Ig M,(г/л)

0,91 (0,70-1,44)

1,34 (0,72-3,26)

Ig G,(г/л)

10,00 (9,00-12,50)

7,00* (4,00-9,60)

ЦИК, у. е.

31,00 (25,00-35,00)

37,50 (26,00-41,00)

CD3+ (%)

62,00 (58,00-67,00)

70,00* (63,00-78,00)

CD4+ (%)

38,00 (33,00-39,00)

36,00 (31,00-41,00)

CD8+ (%)

37,00 (31,00-41,00)

40,00 (35,00-46,00)

CD19+ (%)

15,00 (12,00-17,00)

18,00 (7,00-22,00)

CD16+56+ (%)

22,00 (18,00-28,00)

16,00** (7,00-18,00)

HLA-DR+ (%)

9,00 (7,00-12,00)

8,00 (6,00-19,00)

CD25+ (%)

17,00 (15,00-20,00)

25,00* (18,00-36,00)

CD95+ (%)

32,50 (13,00-38,00)

27,00 (17,50-41,50)

CD4+/CD8+

1,00 (0,85-1,20)

0,87 (0,77-1,08)

* - различие с контролем статистически значимо (р0,01),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,001)


Перечисленные особенности иммунологической реактивности и ДНК-цитометрии клеток периферической крови отражают реакцию организма на базисную терапию. Комплексный подход, объединяющий клиническую картину заболевания, иммунологические показатели, кинетику клеточного цикла, позволяет всесторонне оценить активность процесса и эффективность иммуносупрессивной терапии.

В структуре летальности от новообразований у детей одно из ведущих мест занимают лейкемии и опухоли головного мозга. Для характеристики иммунологической реактивности и функционального состояния клеток периферической крови в условиях опухолевой трансформации нами проведено комплексное клинико-иммунологическое обследование детей с острыми лейкозами, доброкачественными и злокачественными новообразованиями головного мозга. Группы были подобраны с учётом прямого и опосредованного воздействия опухолевого процесса на клетки периферической крови.

По данным ДНК-цитометрии у детей со злокачественными и доброкачественными опухолями головного мозга клетки периферической крови имели диплоидный набор хромосом. Во всех группах наблюдений количество клеток в G0/1 фазе клеточного цикла было достоверно ниже, чем в контроле. Доля клеток в фазе синтеза ДНК, характеризующей пролиферативную активность, превышала данные контрольной группы, и составило 0,16% и 0,20% (таблица 7).


Таблица 7 - Распределение клеток периферической крови у детей с опухолями головного мозга и контрольной группы


Плоидность и фазы клеточного цикла

Контрольная

группа,

(n= 30) Ме

Группа со злокачественными опухолями, (n=12)

Ме

Группа с доброкачественными опухолями, (n=10)

Ме

Диплоид. %

100

100

100

G0/1 %

99,89

(99,83-99,90)

99,51*

(99,38-99,85)

99,75*

(99,50-99,87)

G2 %

0,02

(0,00-0,04)

0,05

(0,00-0,43)

0,05

(0,03-0,10)

S %

0,10

(0,09-0,11)

0,16*

(0,13-0,20)

0,20*

(0,12-0,39)

CV %

2,57

(2,29-2,83)

2,65

(2,44-2,67)

2,63

(2,11-2,73)

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05)


Иммунофенотипирование лимфоцитов методом проточной цитометрии выявило достоверное повышение содержания В-лимфоцитов (CD19+) и высокий уровень клеток с маркёром ранней активации (CD25+) у детей обеих групп. Показатели гуморального звена иммунитета в группе детей с доброкачественными опухолями головного мозга не имели достоверных различий с контролем. У детей со злокачественными новообразованиями отмечалось достоверное, в сравнении с контрольной группой, снижение уровня Ig G (таблица 8).


Таблица 8 - Характеристика иммунологических показателей детей с опухолями головного мозга



Показатели

Контрольная группа,(n=30)

Ме

Группа со злокачественными опухолями

(n=12), Ме

Группа с доброкачественными опухолями (n=10), Ме

Ig A, (г/л)

0,86

(0,75-1,09)

0,83

(0,57-0,97)

1,02

(0,94-1,04)

Ig M,(г/л)

0,91

(0,70-1,44)

1,45

(0,96-1,63)

0,97

(0,85-1,35)

Ig G,(г/л)

10,00

(9,00-12,50)

8,30*

(5,90-8,60)

11,40

(10,60-13,00)

ЦИК, у. е.

31,00

(25,00-35,00)

26,50

(21,50-37,00)

21,00

(20,00-49,00)

CD3+ (%)

62,00

(58,00-67,00)

62,00

(53,00-67,00)

65,00

(51,00-74,00)

CD4+ (%)

38,00

(33,00-39,00)

33,00

(30,00-40,00)

38,00

(33,00-41,00)

CD8+ (%)

37,00

(31,00-41,00)

35,00

(31,00-43,00)

37,00

(32,00-46,00)

CD19+ (%)

15,00

(12,00-17,00)

26,00**

(24,00-30,00)

21,00*

(19,00-24,00)

CD16+56+ (%)

22,00

(18,00-28,00)

12,00

(7,00-30,00)

16,00

(12,00-17,00)

HLA-DR+ (%)

9,00

(7,00-12,00)

7,00

(6,00-9,00)

5,00

(5,00-11,00)

CD25+ (%)

17,00

(15,00-20,00)

28,00*

(22,00-36,00)

27,00*

(21,50-29,00)

CD95+ (%)

32,50

(13,00-38,00)

21,00

(19,00-36,00)

13,00

(11,00-21,50)

CD4+/CD8+

1,00

(0,85-1,20)

1,03

(0,85-1,17)

0,85

(0,81-1,24)

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,005)


Диагноз острого лейкоза устанавливался на основании клинической картины заболевания, цитоморфологических исследований и иммунофенотипирования бластных клеток костного мозга.

У детей с ОМЛ выявлялся диплоидный тип гистограмм. В зависимости от плоидности клеток периферической крови больные с В-ОЛЛ были разделены на две группы: с диплоидным и анеуплоидным типом гистограмм.

Результаты ДНК-цитометрии у детей с В-ОЛЛ отражены в таблице 9. При диплоидном типе гистограмм были выявлены достоверные различия по количеству клеток в G0/1 и S-фазах клеточного цикла. Так, в фазе G0/1 находилось 99,00% клеток (в контрольной группе - 99,89%). Доля клеток в S-фазе составила 0,90%, в контроле- 0,10%. При анеуплоидии различия касались лишь количества диплоидных клеток, что составило 80,0%.


Таблица 9 - Распределение клеток периферической крови по плоидности и фазам клеточного цикла у детей с острым В-лимфобластным лейкозом


Плоидность и фазы клеточного цикла

Контрольная группа

(n= 30), Ме

Группа с В-ОЛЛ

Диплоидный, (n=10) Ме (%)

Группа с В-ОЛЛ

анеуплоидный (n=6) Ме (%)

Диплоидные %

100

100

80,00**

(63,60-93,00)

G0/1 %

99,89

(99,83-99,90)

99,00**

(95,6 -99,40)

99,90

(99,80-100,0)

G2 %

0,02

(0,00-0,04)

0,10

(0,00-0,20)

0,10

(0,01-0,02)

S %

0,10

(0,09-0,11)

0,90**

(0,50-4,50)

0,00

(0,00-0,00)

CV %

2,57

(2,29-2,83)

3,70*

(2,60-4,40)

2,80

(2,70-3,5)

Анеуплоидные %

0

0

20,00

(7,00-36,40)

G0/1 %

0

0

96,75

(95,80-98,50)

G2 %

0

0

0,00

(0,00-0,00)

S %

0

0

3,80

(0,00-4,90)

CV %

0

0

3,30

(2,60-3,80)

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,001)


В группе с диплоидным типом гистограмм отмечалось снижение уровня IgG, во 2-ой группе достоверных различий с контролем по показателям гуморального звена не выявлено (таблица 10).

Показатели клеточного иммунитета в 1-группе характеризовались низким уровнем содержания общих Т-лимфоцитов (CD3+), цитотоксических Т-лимфоцитов(CD8+), ЕКК (CD16+56+) и В-лимфоцитозом (CD19+). При анеуплоидии (2-ая группа), наряду с высоким уровнем В-лимфоцитов, отмечался дефицит естественных киллерных клеток.


Таблица 10 - Характеристика иммунологических показателей детей с острым В-лимфобластным лейкозом


Показатели

Контрольная

группа

(n=30)

Группа с В-ОЛЛ

Диплоидный

(n=10)

Группа с В-ОЛЛ

анеуплоидный (n=6)

Ig A, (г/л)

0,86

(0,75-1,09)

0,70

(0,60-0,70)

0,80

(0,70-0,80)

Ig M,(г/л)

0,91

(0,70-1,44)

0,60

(0,50-0,60)

0,60

(0,60-1,10)

Ig G,(г/л)

10,00

(9,00-12,50)

7,80*

(6,00-8,40)

8,80

(7,40-9,20)

ЦИК, у. е.

31,00

(25,00-35,00)

34,00

(28,00-37,00)

35,00

(21,00-38,00)

CD3+ (%)

62,00

(58,00-67,00)

25,50**

(9,00-54,00)

51,50

(37,00+73,00)

CD4+ (%)

38,00

(33,00-39,00)

25,50

(10,00-40,00)

41,00

(27,00-41,00)

CD8+ (%)

37,00

(31,00-41,00)

14,00**

(10,00-27,00)

22,00

(18,00-35,00)

CD19+ (%)

15,00

(12,00-17,00)

61,00**

(45,00-75,00)

63,00**

(26,00-67,00)

CD16+56+ (%)

22,00

(18,00-28,00)

6,00*

(3,00-7,50)

14,00**

(8,00-15,00)

HLA-DR+ (%)

9,00

(7,00-12,00)

7,00

(3,00-65,00)

7,00

(6,00-10,00)

CD25+ (%)

17,00

(15,00-20,00)

22,00*

(20,00-50,00)

15,50

(12,00-19,50)

CD95+ (%)

32,50

(13,00-38,00)

16,50

(9,00-25,50)

15,00

(14,00-20,00)

* - различие с контролем статистически значимо (р0,05),

** - различие с контролем статистически значимо (р0,001)


^ Корреляционные взаимосвязи между показателями иммунного статуса и ДНК-цитометрии клеток периферической крови.


Для изучения взаимосвязей между различными звеньями системы иммунитета и данными ДНК-цитометрии проведён корреляционный анализ (рисунок 3).

В контрольной группе прямые взаимосвязи высокой степени интенсивности установлены между количеством диплоидных клеток, находящихся в G0/1-фазе и количеством CD4+, CD25+-клеток, что, очевидно, отражает нормальное содержание ДНК в клетках-индукторах.




При врождённых пороках развития МПС была выявлена прямая корреляционная зависимость между количеством анеуплоидных клеток и ЕКК (CD16+56+) клетками (rs = 0,94), что мы расценили как высокую степень сопряженности естественных киллерных клеток с феноменом анеуплоидии. Анализ корреляционных связей в популяции Т-лимфоцитов с хелперной активностью (CD4+) позволил сделать вывод о том, что наиболее типичным вариантом для CD4+ клеток является диплоидный набор хромосом, причём большая часть Т-хелперов - индукторов находилась в фазе синтеза ДНК.

Особенности кинетики клеточного цикла в группе детей с хроническим гломерулонефритом отражены в корреляционных взаимосвязях между числом диплоидных клеток в G1-фазе и количеством сегментоядерных нейтрофилов (rs =0,71), а также числом диплоидных клеток в S-фазе и содержанием лимфоцитов (rs = 0,79).

Исследованиями в области онкологии доказано, что цитотоксические Т-лимфоциты (CD8+), проникая через гематоэнцефалический барьер, вступают в непосредственный контакт с опухолевыми клетками и течение злокачественного процесса зависит, наряду с прочими факторами, от уровня цитотоксической активности иммунокомпетентных клеток [Perrini G., et al. 1999]. Корреляционная матрица в группе больных с опухолями головного мозга, отражающая обратную связь между цитотоксическими Т-лимфоцитами и способностью клеток к пролиферации, по нашему мнению, характеризует клеточные механизмы, обеспечивающие противоопухолевую защиту.

Анализ корреляционных взаимосвязей у больных с острыми лейкозами выявил различные типы межклеточной кооперации в зависимости от плоидности клеток. При диплоидном типе гистограмм наиболее выраженной (rs = 0,70) была взаимосвязь между количеством клеток в G1-фазе и цитотоксическими Т-лимфоцитами (CD8+). Высокий уровень сопряжённости между В-лимфоцитами и количеством клеток с анеуплоидией (rs = 0,81), установлен во второй группе, что вполне логично, так как именно эта популяция подвержена неконтролируемой пролиферации при В-ОЛЛ.

Таким образом, прикладное значение проведенных комплексных исследований заключается в определении диагностических и прогностических возможностей ДНК - цитометрии клеток периферической крови и установлении взаимосвязей между иммунологическими показателями и функциональными характеристиками клеток у здоровых детей и при различных патологических состояниях.

Изучение процессов, протекающих в иммунокомпетентных клетках, включающих определение плоидности и кинетики клеточного цикла, способствует оптимизации диагностики и лечения детей с различными заболеваниями. Результаты проведённых исследований, особенности ДНК-цитометрии периферической крови, внесут свой вклад в формирование лабораторного перечня для характеристики функционального состояния клеток.


Выводы


1 ДНК-цитометрия клеток периферической крови у практически здоровых детей характеризуется диплоидным типом гистограмм: (99,860,02)% клеток находится в G0/1- фазе, (0,10,01)% в стадии синтеза ДНК (S-фазе), в G2/М - фазе – (0,040,01)%. К особенностям иммунологической реактивности у здоровых детей относится высокий уровень цитотоксических Т-лимфоцитов и естественных киллерных клеток (CD16+56+).

2 Иммунопатологические реакции при врождённых пороках развития мочеполовой системы у детей характеризуются снижением цитотоксических Т-лимфоцитов и естественных киллерных клеток, высоким уровнем циркулирующих иммунных комплексов. При хронических гломерулонефритах отмечается снижение количества естественных киллерных клеток, высокое содержание клеток с маркёрами активации (CD25+) и циркулирующих иммунных комплексов. При доброкачественных и злокачественных опухолях головного мозга выявляется высокое содержание В-лимфоцитов и клеток с маркёрами активации (CD25+), при остром В-лимфобластном лейкозе - В-лимфоцитоз (CD19+).

3 ДНК-гистограммы во всех группах наблюдения характеризуются диплоидным типом. Анеуплоидия выявляется у детей с врождёнными пороками развития мочеполовой системы в терминальной стадии хронической почечной недостаточности и остром В - лимфобластном лейкозе. При хроническом гломерулонефрите на фоне базисной терапии отмечаются достоверные различия с контрольной группой по показателям кинетики клеточного цикла (фазы пролиферации).

4 При врождённых пороках развития мочеполовой системы в терминальной стадии хронической почечной недостаточности анеуплоидия сопряжена с естественными киллерными клетками, а при остром В-лимфобластном лейкозе - с В-лимфоцитами.


^ Практические рекомендации

1 Результаты иммунофенотипирования и ДНК-цитометрии клеток периферической крови в группе здоровых детей рекомендуются в качестве ориентировочных нормативных показателей при сравнительной оценке иммунного статуса и функционального состояния клеток.

2 Рекомендовано включение ДНК-цитометрии клеток периферической крови в иммунологический мониторинг перед трансплантацией почки для исключения анеуплоидии.

3 Мониторинг показателей пролиферативной активности клеток по данным ДНК-цитометрии периферической крови рекомендован в качестве маркера активности процесса и эффективности иммуносупрессивной терапии при хронических гломерулонефритах.


^ Список работ, опубликованных по теме диссертации

1 ДНК-цитометрия в диагностике лейкозов / З.Р. Хаматдинова, Р.М. Хайруллина, Т.Н. Красавцева, Е.В. Чувилина // Нижегородский медицинский журнал «Здравоохранение Приволжского Федерального Округа». - 2004. - С. 53.

2 Проточная цитометрия в диагностике острых лейкозов у детей / Р.М. Хайруллина, З.Р. Хаматдинова, А.Ж. Гильманов, Е.В. Чувилина, Н.Ф. Хисамова // Медицинская иммунология. - 2005. – Т. 7, № 2-3. - С. 212.


3 ДНК - цитометрия клеток периферической крови у детей с патологией мочеполовой системы / Н.Ф. Хисамова, З.Р. Хаматдинова, Р.М. Хайруллина, Р.З. Ахметшин // Медицинская иммунология. - 2007. – Т. 9, № 2-3. - С. 343.

4 Иммунофенотипическая характеристика бластных клеток при верификации острых лейкозов / З.Р. Хаматдинова, Р.М. Хайруллина, Н.Ф. Хисамова, Т.Н. Красавцева // Современные аспекты оказания стационарной медицинской помощи детям: материалы Всероссийской научно-практической конференции. - Уфа, 2007. - С. 213.

5 ДНК-цитометрия периферической крови в педиатрической практике / Н.Ф. Хисамова, Р.М. Хайруллина, З.Р. Хаматдинова, А.Ж. Гильманов // Клиническая лабораторная диагностика. - 2007. - № 9 - С. 57.

6 DNA CONTENT IN PERIFERAL WHITE BLOOD CELL AT CONGENITAL URINARY TRACT MALFORMATIONS IN CHILDREN / N. Khisamova, R. Khairullina, Z. Khamatdinova, A. Gilmanov // Laboratorine MEDICINA. - 2008. – Vol. 10: Program and Abstracts 9th Baltic Congress of Laboratory Medicine. - P. 27.


^ СПИСОК ОСНОВНЫХ СОКРАЩЕНИЙ


РФ – Российская Федерация

ХГН – хронический гломерулонефрит

ХПН - хроническая почечная недостаточность

ВПРМПС – врождённые пороки развития мочеполовой системы

^ МПС - мочеполовая система

СD –
кластеры дифференцировки

Ig A – иммуноглобулины класса А

Ig M - иммуноглобулины класса М

Ig G - иммуноглобулины класса G

ЦИК – циркулирующие иммунные комплексы

ЕКК - естественные киллерные клетки

ИКК - иммунокомпетентные клетки

СОЭ – скорость оседания эритроцитов

В-ОЛЛ - острый В-лимфобластный лейкоз


ХИСАМОВА

^ НАЗИЛЯ ФАГИЛЬЕВНА


ИММУНОЛОГИЧЕСКАЯ РЕАКТИВНОСТЬ, ПЛОИДНОСТЬ И

КИНЕТИКА КЛЕТОЧНОГО ЦИКЛА КЛЕТОК ПЕРИФЕРИЧЕСКОЙ КРОВИ ПРИ РАЗЛИЧНЫХ ПАТОЛОГИЧЕСКИХ СОСТОЯНИЯХ

У ДЕТЕЙ


АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание учёной степени

кандидата медицинских наук


Лицензия на издательскую деятельность

ЛР № 021319 от 05.01.99 г.


Подписано в печать 25.02.2009 г. Формат 60×84/16.

Усл. Печ. Л. 1,04. Уч.-изд. Л. 1,08.

Тираж 100 экз. Заказ 104.


Редакционно-издательский центр

Башкирского государственного университета

450074, РБ, г. Уфа, ул. З. Валиди, 32.


Отпечатано на множительном участке

Башкирского государственного университета

450074, РБ, г. Уфа, ул. З. Валиди, 32.






Ваша оценка этого документа будет первой.
Ваша оценка:

Похожие:

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Кальциурия у детей при некоторых патологических состояниях 14. 11. 08 Педиатрия

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Методика сравнительной перкуссии легких. 15. Характеристика перкуторных звуков, получаемых при перкуссии

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Стратегия мультимаркерной оценки действия омега-3 полиненасыщенных жирных кислот при различных патологических

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Лекций по терапевтической стоматологии для студентов 4 курса стоматологического факультета на 2012-2013
Периодонт. Строение, функции. Клиническая и рентгенологическая характеристика здорового периодонта....
Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Иммунологическая реактивность при экспериментальном воздействии лазерной гипертермии Снаночастицами

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Тесты Возможно ли нарушение функции при других патологических состояниях кроме повреждений? + Да

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Практических занятий по хирургической стоматологии для студентов стоматологического факультета (осенний
Параметры гомеостаза и иммунологическая реактивность. Изменение иммунологической реактивности организма...
Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Применение метода изучения вариабельности сердечного ритма при различных состояниях

Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Лекций по терапевтической стоматологии для студентов 3 курса стоматологического факультета, на 6
Физиологические данные о пульпе зуба. Изменения в пульпе при старении и патологических состояниях
Хисамова назиля фагильевна иммунологическая реактивность, плоидность и кинетика клеточного цикла клеток периферической крови при различных патологических состояниях у детей icon Козлова Елена Александровна клиническое значение состояния интралейкоцитарной микробицидной системы

Разместите кнопку на своём сайте:
Медицина


База данных защищена авторским правом ©MedZnate 2000-2016
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям
Документы