2. Десмургия. Общие вопросы десмургии
|
|
Скачать 2.32 Mb.
|
| Доврачебная помощь 1. Асептика и антисептика. 1.1. Определение понятия. История вопроса. 1.2. Пути распространения инфекции. 1.3. Профилактика контактной и имплантационной инфекции. Стерилизация и дезинфекция. 1.4. Виды антисептики 1.4.1. Механическая антисептика 1.4.2. Физическая антисептика 1.4.3. Химическая антисептика 1.4.4. Биологическая антисептика 2. Десмургия. 2.1. Общие вопросы десмургии. 2.2. Повязки на различные области тела. 3. Раны, раневой процесс. Виды заживления ран. 3.1. Определение понятия. Классификация. 3.2. Виды заживления ран. 3.3. Доврачебная помощь при ранениях. 4. Кровотечения и кровопотеря. 4.1. Классификация кровотечений. 4.2. Доврачебная помощь при кровотечениях. 5. Повреждения опорно-двигательного аппарата. Транспортная иммобилизация. 5.1. Ушибы. Растяжения. Вывихи. 5.2. Клиническая картина переломов. 5.3. Первая помощь при переломах. Транспотрная иммобилизация. 6. Повреждения грудной клетки. 6.1. Классификация 6.2. Переломы ребер 6.3. Пневмоторакс 7. Ожоги. Отморожения. 7.1. Ожоги. 7.1.1. Классификация ожогов 7.1.2. Определение глубины поражения 7.1.3. Доврачебная помощь при ожогах 7.2. Отморожения. 7.2.1. Причины отморожений и их классификация 7.2.2. Помощь при отморожениях 8. Политравма. Массовые поражения. 8.1. Политравма, принцип взаимоотягощения 8.2. Организация помощи при массовых поражениях 9. Острые хирургические заболевания органов брюшной полости. 10. Некоторые виды острой хирургической инфекции. 11. Острые заболевания сердечно-сосудистой системы. 11.1. Стенокардия 11.2. Инфаркт миокарда 11.3. Коллапс 11.4. Гипертонический криз 12. Острая дыхательная недостаточность 12.1. Приступ бронхиальной астмы 12.2. Нарушение проходимости верхних дыхательных путей 13. Диабетические комы. 13.1. Гипергликемическая кома 13.2. Гипогликемическое состояние 14. Острые отравления. 15. Нарушения сознания 15.1. Общие вопросы 15.2. Обморок 15.3. Кома 16. Критические состояния. Общие вопросы реанимации. 16.1. Классификация критических состояний 16.2. Сердечно-легочная реанимация 17. Анафилактический шок 1. Асептика и антисептика. 1.1. Определение понятия. История вопроса. 1.2. Пути распространения инфекции. 1.3. Профилактика контактной и имплантационной инфекции. Стерилизация и дезинфекция. 1.4. Виды антисептики 1.4.1. Механическая антисептика 1.4.2. Физическая антисептика 1.4.3. Химическая антисептика 1.4.4. Биологическая антисептика ^ Асептика- система профилактических мероприятий, направленных на предупреждение попадания микроорганизмов в рану, ткани, органы при операциях и манипуляциях. Антисептика – комплекс лечебно- профилактических мероприятий, направленный на уничтожение микроорганизмов. Попавших в рану или создание условий способствующих их уничтожению. Это деление до некоторой степени условно и в ряде случаев разделение асептики и антисептики затруднено. Многие врачи ещё в древности чисто эмпирически пришли к выводу о необходимости обеззараживания ран. Для этой цели применяли прижигание раны раскаленным железом, кипящим маслом, т.е. в современном понятии использовали физическую антисептику; применяли уксус, известь, различные бальзамические мази, т.е. использовали химическую антисептику. Сведения о применении этих методов обеззараживания ран находим в трудах древнейших ученых Гиппократа, Цельса, Ибн-Сины. В1843 Холмс, а 1847г. Земмельвейс предложили для обеззараживания рук акушеров применять раствор хлорной извести. Н.И.Пирогов рекомендовал использовать для обеззараживания ран настойку йода, раствор азотнокислого серебра, спирта. Но эти поиски также были эмпирическими. Происхождение термина и развитие метода Антисептики во многом связано с именем Луи Пастера, который в 1863 году, доказал, что гниение и брожение обусловлены попаданием и жизнедеятельностью микроорганизмов. Перенеся идею Пастера в хирургию Листер дал научное обоснование нагноения ран, объяснив его попаданием и развитием в ней бактерий. Своим трудом “О новом способе лечения переломов и гнойников с замечаниями о причинах нагноений” (1867г.), в котором были изложены принципы его учения, Листер произвел переворот в хирургии, открыв новую «антисептическую» эру. В целях уничтожения микробов Листер предложил обеззараживать воздух операционной распылением из пульверизатора раствора карболовой кислоты (фенола), все инструменты и рана стерилизовались с применением 3-5% карболовой кислоты, на рану после операции также, накладывалась повязка, пропитанная карболовой кислотой и смолами. Метод Листера объединял в себе принципы асептики “Все, что соприкасается с раной, должно быть стерильным” и антисептики. Применение этой методики привело к резкому уменьшению нагноений и летальных исходов и быстро нашло большое количество сторонников. В России этот метод впервые был применён И.И.Бурцевым в 1870г. Однако, широкое применение Листера выявило и его недостатки: карболовая кислота вызывала обширные некрозы в области раны, дерматозы и экземы у хирургов, а учитывая, что фенол является мощным гемолитическим ядом, глубокие отравления у хирургов и больных. Это потребовало поиска новых средств и методов уничтожения микробов и антисептика стала неотъемлемой частью хирургического лечебного метода. Метод асептики является дальнейшим развитием метода антисептики и тесно связан с ним. Основоположниками асептики является немецкие ученые хирурги Бергман и Шиммельбуш, а в России М.С. Субботин и П.И. Дьяконов. В 1890 году на 10 Международном конгрессе врачей в Берлине Бергманом был впервые провозглашен основной закон асептики - “ Все, что проходит в соприкосновение с раной должно быть свободно от бактерий”. В начале метод асептики был направлен на предохранение больного и персонала от вредного воздействия фенола Листеровской методики, и начисто отмело применение антисептики. Но в дальнейшем было выяснено, что одна асептика не в состоянии обеспечить профилактику нагноений и что необходимо, комплексное применение асептики и антисептики. 1.2. Пути распространения инфекции. ^ Бактерии находятся в большом количестве на всех окружающих человека предметах, в воздухе, на поверхности тела, в содержимом внутренних органов и т. д. Стафилококковая инвазия, имевшая ведущее значение до середины 60-х годов, в настоящее время постепенно заменяется и теснится грамотрицательными бактериями (Klebsiella pneumoniae, Enterobacter cloaque, Serratia marcescens, Е. coil, Pseudomonas aeruginosa, Proteus species), грибами и вирусами. Источники, из которых патогенные бактерии проникают в рану, бывают экзогенными и эндогенными. Экзогенной считается инфекция, попадающая в рану из внешней среды, окружающей больного: 1) из воздуха — воздушная инфекция; 2) с брызгами слюны и других жидкостей — капельная инфекция; 3) с предметов, соприкасающихся с раной — контактная инфекция; 4) с предметов, оставляемых в ране (швы, дренажи, металлические стержни и пластинки, искусственные клапаны сердца, синтетические протезы сосудов, электрокардиостимуляторы и т. д.) — имплантационная инфекция. Воздух как средство передачи инфекции (патогенный стафилококк) играет важную роль, особенно в операционных, реанимационных отделениях и отделениях интенсивной терапии. Перенос патогенных микроорганизмов от больного к больному обозначается как перекрестная инфекция. С увеличением длительности пребывания больного в больнице эта опасность возрастает, поэтому необходимо добиваться, чтобы время предоперационного обследования и послеоперационного пребывания больного в стационаре было как можно меньше. Операционные отделения, помещения центральной стерилизационной, отделение интенсивной терапии, диагностические кабинеты, в которых возможен переход воздушной и капельной инфекции от больного к больному, от персонала и посетителей к больному и наоборот, душ и ванны следует рассматривать как зоны, нуждающиеся в особенно тщательном контроле. Контактная и имплантационная инфекция в большинстве случаев связана с гнилостным распадом тканей, развитием септицемии и септического шока. Возбудители инфекции в большом количестве находятся в ротовой полости, кишечнике, выводных протоках сальных и потовых желез. К примеру, синегнойная палочка хорошо развивается в сырости, поэтому ее чаще всего обнаруживают в раковинах, ваннах, мочевых приемниках, на полотенцах, тряпках, в цветочных горшках. Клостридии (возбудители столбняка и газовой инфекции) обнаруживавются чаще всего в пыли и грязи. Существенное значение имеет дезинфекция матрацев, подушек, одеял; необходимо для каждого вновь поступившего больного иметь продезинфицированные постельные принадлежности. Эндогенной считается инфекция, находящаяся внутри организма или на его покровах. Эндогенная инфекция попадает в рану либо непосредственно, либо по сосудистым (лимфатическим или кровеносным) путям. Основными очагами эндогенной инфекции являются: 1) воспалительные процессы покровного эпителия (фурункулы, карбункулы, пиодермии, экземы и т. д.); 2) очаговая инфекция желудочно-кишечного тракта (кариес зубов, гингивиты, холециститы, холангиты, панкреатиты и т. д.); 3) инфекция дыхательных путей (гаймориты, фронтиты, трахеиты, бронхиты, воспаление легких, бронхоэктазы, абсцессы легких); 4) воспаления урогенитального тракта (пиелиты и циститы, простатиты, уретриты, сальпингоофориты); 5) очаги неизвестной (криптогенной) инфекции. Иногда проникающие в организм патогенные микробы отграничиваются плотным соединительнотканным валом. Такая дремлющая или латентная инфекция вокруг инородных тел, паразитических червей (эхинококк) даже через много лет при понижении реактивности организма может резко обостриться. 1.3. Профилактика контактной и имплантационной инфекции. Стерилизация и дезинфекция. ^ Стерилизация достигается с помощью физических и химических методов. К физическим методам относятся термическая и лучевая стерилизация (кипячением, стерилизация паром под давлением, сухожаровая стерилизация, гамма-облучение). Химические методы стерилизации включают в себя стерилизацию окисью этилена, обработку надуксусной кислотой, а также химиотерапевтическую обработку. Кроме того, для создания асептических условий в операционных или в изоляторах используют физиотерапию воздуха с целью очищения его от бактерий. Наиболее надежными считаются термические способы стерилизации, лучевая стерилизация и стерилизация окисью этилена. При термических способах стерилизация производится либо водяным паром в автоклаве при температуре 120—132С (рис. 1), либо сухим паром в сухожаровых стерилизаторах (шкаф) при температуре 170—200°С.  Стерилизация паром. Горячий водяной пар служит переносчиком тепла. Он действует интенсивнее, чем горячий воздух, так как высокая теплоемкость пара при конденсации переносится на стерилизуемый объект. Одновременно пар действует как непосредственный стерилизующий агент путем гидратирования, коагуляции и гидролиза белков  Рис. 16. Схемы (а, б) парового стерилизатора (автоклава): А — наружная стенка стерилизатора; Б — внутренняя стенка стерилизатора; 1 — термометр; 2 — манометр; 3 — источник тепла; 4 — вводный кран; 5 — выпускной кран. Аппарат для стерилизации паром под давлением (автоклав) состоит из двух металлических цилиндров разного диаметра, вставленных один в другой так, что между ними остается пространство, которое наполняется водой (рис. 16). Во внутреннюю камеру автоклава кладут стерилизационные коробки с фильтром, биксы перевязочного материала или пакеты с инструментами в двухслойной упаковке из бязи или в пергаментной бумаге. Плотно завинчивают боковую дверь парового стерилизатора и начинают стерилизацию в заданном режиме. Паровой стерилизатор оборудован термометром, манометром (указывает давление пара внутри аппарата) и предохранительным клапаном, который срабатывает при нарастании избыточного давления. Автоклавирование проводится при давлении пара 1,1+0,1 кгс/см2 в течение 45+3 мин или 2,0 ±0,1 кгс/см2 в течение 20+2 мин. Все предметы, которые не выдерживают высокой температуры жаровой стерилизации и для которых температура пара не является повреждающей, должны стерилизоваться автоклавированием (перевязочный материал, резиновые и синтетические предметы, бумажные фильтры, закрытые ампулы и банки с водосодержащими препаратами и др.). По окончании стерилизации пар из аппарата удаляют через выпускной кран в воду и выводят в канализационный сток. Отвинчивают боковой люк, выпускают остаток пара и в течение некоторого времени проводят сушку материала теплом стенок стерилизатора. Сухожаровая стерилизация. При сухожаровой стерилизации (рис. 17) происходит разогревание стерилизуемых объектов. Так как горячий воздух в отличие от водяного пара служит только переносчиком тепла, температура стерилизуемых предметов должна достигнуть 170—200°С (180±14°С) при экспозиции 60+5 мин. Термическое распределение обеспечивают за счет поступления нагретого воздуха через специальный клапан в нижней части воздушного стерилизатора, а его выход — через верхний клапан. При подъеме воздух отдает тепло стерилизуемым объектам. Путем сухожаровой стерилизации можно обрабатывать все термостабильные, негорючие материалы из стекла, металла или фарфора. Сухожаровая стерилизация непригодна для перевязочного материала, резины, катетеров, изделий из бумаги и пластиков. Стерилизуемые объекты, например шприцы, закладывают чистыми и сухими в холодный аппарат (рис. 18). Добавление новых материалов и предметов для стерилизации недопустимо. После отключения воздушного стерилизатора необходимо дождаться снижения температуры до 80 °С. Подключенный к электросети стерилизатор нельзя открывать, так как поступление кислорода может привести к воспламенению. Несмотря на наличие автоматики и программированного управления, автоклавы и сухожаровые стерилизаторы недопустимо оставлять без присмотра персонала. Лучевая стерилизация. Этот вид стерилизации осуществляется ионизирующим излучением большой энергетической мощности, проникающим в стерилизуемый материал на различную глубину. В практических целях применяются бета- и гамма-излучение. Для стерилизации гамма-излучением изотопами 60Со и 137Cs доза облучения должна быть весьма значительной — не менее 2,5 мрад (25000 Гр), чтобы исключить возможность оставления жизнеспособной Особенно удобна стерилизация гамма-излучением сывороток, вакцин, биологических тканей, лекарственных препаратов, медицинских изделий одноразового пользования (системы для переливания крови, атравматические иглы, трахеостомические канюли, электрокардиостимуляторы и т. п.). Существенным препятствием к широкому внедрению лучевого метода стерилизации является опасность проникающей радиации для людей. Это заставляет создавать громоздкую систему противолучевой защиты гамма-установок, что по силам только мощным специализированным учреждениям. Возможна также стерилизация ультразвуком. Стерилизаторы наполняют слабым антисептиком (0,05% водный раствор хлоргексидина биглюконата), в котором под воздействием ультразвуковых волн стерилизуют хирургический инструментарий, мелкие пластмассовые изделия или производят дезинфекцию рук. Химическая стерилизация. Увеличение числа приборов и устройств, которые трудно стерилизовать традиционными методами, способствовало появлению новых методов стерилизации. Под химической (холодной) понимают стерилизацию с помощью окиси этилена или сильнодействующих антисептиков (0,2% раствор надуксусной кислоты, 6% раствор перекиси водорода, 0,1%-терги-цида, 0,5% спиртовой раствор гибитана, сайдекс, тройной раствор и др.). Холодная стерилизация осуществляется в условиях, при которых температура не превышает температуры коагуляции белка (от 45 до 60 °С; рис. 19).  Рис. 19. Камера для новой стерилизации пароформалиновой стерилизацииОкись этилена, оказывающая бактерицидное действие за счет алкилирования протеинов бактерий, растворима в воде, спиртах. При нормальных атмосферных условиях это бесцветный газ с неприятным эфирподобным запахом. Применяются портативные газовые стерилизаторы с полезным объемом 2—3 л (ГДР, ВНР). При температуре 55°С, концентрации окиси этилена 750—1000 мг/л и соответствующей влажности газа успешно используется управляемая программа стерилизации при небольшом избыточном давлении, что предотвращает улетучивание газа. Газовые стерилизаторы не требуют большого помещения, необходимо наладить лишь вентиляцию; после стерилизации оставшийся газ удаляют через выпускники камеры в вытяжные трубы. С помощью газовой стерилизации следует обрабатывать лишь те предметы, которые не выдерживают стерилизацию в автоклаве или воздушном стерилизаторе. Окисью этилена стерилизуют катетеры из искусственных материалов, хирургические перчатки, протезы сосудов, эндоскопы, кардиостимуляторы, отдельные узлы респираторов и аппаратов искусственного кровообращения с выдержкой 6—16 ч. Изделия, простерилизованные газовым методом, применяют после выдержки в вентилируемом помещении в течение 1—5 сут. Проверка качества стерилизации. Вещества и предметы считаются стерильными, если они в упакованном виде обработаны термическим путем или облучением и если эффект стерилизации подтвержден индикатором стерильности. Контроль работы воздушных и паровых стерилизаторов проводят с применением химических тест-индикаторов и с помощью максимальных термометров. Показателями качества работы стерилизаторов являются: изменение исходного состояния (цвет, агрегатное состояние) химических тест-индикаторов и отклонение температуры в различных точках камеры парового стерилизатора от номинального значения в пределах Т±2°С. Контроль работы воздушных стерилизаторов осуществляется цветным термоиндикатором ТИК № 6 и гидрохиноном. Нанесенная на бумагу термоиндикаторная краска марки ТИК № 6 светло-салатового цвета при температуре 175—180°С становится темно-коричневой. Гидрохинон в количестве 0,3 г помещается в стеклянный флакон. При температуре 170—175°С серо-коричневый порошок гидрохинона превращается в расплавленную массу черного цвета. Работу парового стерилизатора ежедневно контролируют тест-индикатором мочевины или бензойной кислоты с фуксином. При режиме стерилизации 132 °С и давлении в 2 ат белый порошок мочевины плавится, превращаясь в аморфную массу того же цвета (в биксы помещается флакончик с мочевиной в количестве 0,3 г). При режиме стерилизации 120 °С и давлении в 1,1 ат в качестве индикатора применяют бензойную кислоту с фуксином, фуксин выполняет роль красителя. При температуре, близкой к пару (120 °С), бензойная кислота с кислым фуксином расплавляются, превращаясь в аморфную массу красного цвета, а с основным фуксином — синего цвета. Применение серы для контроля эффективности стерилизации не рекомендуется. Контроль за качеством стерилизации окисью этилена проводят с использованием индикоторов в виде раствора глицерола с этиленом (раствор I) и бромида лития, бромкрезолового пурпурного с этанолом (раствор II). Помимо обязательного ежедневного контроля эффективности стерилизации в стерилизаторе пробой на достижение точки плавления раз в неделю (выборочно) или через 10 дней проводят бактериологический контроль материала. Бактериологический контроль является самым надежным методом контроля стерильности. Его недостатком является продолжительный период и трудоемкость исследования. В связи с этим в клинической практике широко используются перечисленные экспресс-методы. ^ Использованные инструменты подвергают предстерилизационной очистке. Режим очистки складывается из промывания их горячей водой в течение 30 сек с последующим замачиванием в специальной емкости в моющем растворе (температура моющего раствора 50°С, экспозиция 15 мин). После этого инструменты моют ершом или ватно-марлевым тампоном в моющем растворе в течение 30 сек, споласкивают проточной водой, кипятят в течение 5 мин в дистиллированной воде и сушат горячим воздухом при температуре 85°С. Качество предстерилизационной очистка инструментов оценивают путем постановки ампдопириновой, бензидиповой (реже орто-толуидиновой) и фенолфталеиновой проб на наличие остаточных компонентов моющего препарата и крови. При положительной пробе на кровь или моющие средства вся группа контролируемых изделий подлежит повторной обработке до получения отрицательного результата. Изделия медицинского назначения, используемые при проведении гнойных операций или манипуляций у инфицированных больных, перед предстернлнзационной очисткой проходят дезинфекцию. Изделия из коррозионно-нестойких материалов обеззараживают преимущественно кипячением в 2% растворе гидрокарбоната натрия в течение 30 мин, при наличии анаэробной инфекции продолжительность кипячения составляет 90 мин. Дезинфекцию изделий медицинского назначения осуществляют погружением в 1% раствор хлорамина на 30 мин, 3% перекиси водорода с 0,5% моющих средств на 80 мин, 0,1% дезоксоп-1 (по надуксусной кислоте) на 15 мин. В воздушных стерилизаторах стерилизацию производят при температуре 180°С в течение 60 мни. При стерилизации воздушным методом режущие инструменты (иглы, лезвия, скальпели) не тупятся. Наборы инструментов также стерилизуют в автоклаве при 1,1 ат в течение 45 мин или 20 мин при 2 ат. Срок сохранения стерильности инструментов 3 сут. Хирургические инструменты из коррозионно-стойких металлов и изделия из пластмасс (резины) можно стерилизовать в 6% растворе перекиси водорода при температуре 18°С в течение 360 мин или I80 мин при 50°С. Изделия из резины, пластических масс и корозионно-стойких металлов стерилизуют также в 1% растворе дезоксона-1 (по надуксусной кислоте), время обработки 45±5 мин. Дезинфекцию инструментов можно производить тройным раствором (2% формалин, 0,3% фенол, 1,5% двууглекислая сода) в течение 45 мин, 0,1% раствором сульфохлорантина и 1% дихлором-1 в течение 30 мин. Шприцы стерилизуют в разобранном виде: в связи с различным коэффициентом расширения стекла (цилиндра) и металла (поршень) при стерилизации в собранном виде цилиндры часто трескаются. Стерилизацию осуществляют в централизованных стерилизационных в воздушных стерилизаторах при температуре 180°С в течение 60 мин. Шприцы хранят в стерильной упаковке. Желательно пользоваться шприцами одноразового пользования, прошедшими стерилизацию гамма-излучением или окисью этилена. В амбулаторной практике возможна стерилизация шприцев кипячением в течение 45 мин. В последние годы находят применение дезинфекция или стерилизация эндоскопов, пластмассовых катетеров, преобразователей и других изделий с помощью 2% растворов глутарового диальдегида (активатор) и гипохлорида натрия (ингибитор коррозии), входящего в состав препарата сайдекс; срок обработки 45—180 мин. Применяется также 0,1% раствор тергицида в течение 30—60 мин. Мочеточниковые катетеры и эндоскопы можно стерилизовать и одним из ранее предложенных способов: 1. Помещение в специальные герметические закрывающиеся стерилизаторы, на дно которых кладут таблетки формальдегида. Стерилизация обеспечивается парами формалина при экспозиции 48 ч. 2. Опускание на 10 мин в этанол, затем на 5 мин в раствор цианида ртути (1 : 1000); перед употреблением протереть этанолом. Отдельные узлы аппаратов искусственного кровообращения, искусственной почки, респираторов и других приборов стерилизуют кипячением, в воздушном стерилизаторе, в катионно-анионных растворах или окисью этилена. При пользовании окисью этилена продолжительность стерилизации составляет 6—16 ч. Перед употреблением узлы аппаратов промывают дистилированной водой. ^ Перевязочный материал и белье, используемые во время операций и при перевязках, должны быть стерильны. В качестве перевязочного материала применяют марлю, вату и лигнин, основными свойствами которых являются хорошее впитывание жидкостей (гигроскопичность), мягкая поверхность и эластичность. Они должны хорошо переносить воздействие высокой температуры во время стерилизации. Чаще всего применяется марля. Марля — хлопчатобумажная ткань, которая после особой обработки делается мягкой, белой, обезжиренной и гигроскопичной. Нити этой ткани не прилегают друг к другу, а расположены в виде мелкой сетки. Из марли делают бинты различной ширины, салфетки, тампоны, шарики и др. Более плотная марля менее гигроскопична. Складывая салфетки, шарики, тампоны и т. п., необходимо завернуть края марли внутрь, чтобы обрывки нитей не попадали в рану и не препятствовали ее заживлению. Вату как белую (гигроскопическая), так и серую (негигроскопическая) делают из хлопка. Ограниченно применяется и вата из искусственных волокон. Большим преимуществом белой ваты является ее гигроскопичность, однако при перевязках вату всегда укладывают над марлей из-за ее свойства прилипать к поверхности и краям раны. Лигнин изготавливают из древесины, он на редкость гигроскопичен, однако в присутствии раневого оделяемого разлагается, что препятствует его широкому применению. В качестве операционного белья используют большие и малые простыни, салфетки, полотенца, пеленки, халаты для медицинского персонала, нарукавники, маски, шапочки и т. д. Перевязочный материал и операционное белье стерилизуют в автоклаве при высокой температуре под давлением пара 1,1 ат в течение 45 мин (температура 120 °С) или 2 ат в течение 20 мин (132°С). Наиболее удобны для стерилизации и хранения материала стерилиза-ционные коробки с фильтром и металлические барабаны или биксы Шиммельбуша — металлические коробки различной величины и формы с крышкой и отверстиями по бокам (рис. 21, 22). Эти отверстия открывают во время стерилизации, передвигая вокруг бикса металлический ободок. Перевязочный материал или операционное белье укладывают в металлических биксах (иногда в брезентовых мешках) так, что каждый предмет занимает определенный сектор. После завершения стерилизации металлический ободок бикса тут же закрывают. Биксы хранят в закрытом помещении, ключ от которого находится у старшей операционной сестры. Срок сохранения стерильности перевязочного материала или операционного белья в биксах составляет 3 сут. Стерилизация перевязочного материала и операционного белья в воздушных стерилизаторах при температуре 180 °С не пригодна, так как материал портится. ^ Для стерилизации резиновых перчаток пользуются следующими методами: 1. Пересыпают их пудрой или тальком, завертывают в марлевую салфетку, укладывают в биксы Шиммельбуша и стерилизуют в паровом стерилизаторе при температуре 120 °С под давлением 1,1 ат 45 мин. 2. Перчатки кипятят в воде 45 мин. 3. Перчатки погружают в раствор детергентов на 60 мин. 4. Стерилизуют перчатки в портативных газовых стерилизаторах окисью этилена. Резиновые перчатки после использования моют под проточной водой с мылом, дезинфицируют в 1% растворе хлорамина 30 мин, прополаскивают в проточной воде и сушат. При возможности лучше пользоваться перчатками одноразового пользования, их стерилизация осуществляется гамма-лучами. ^ Хирургический шовный материал должен быть стерильным, прочным на разрыв и хорошо переноситься тканями, а после выполнения своей фиксирующей функции по возможности рассасываться. Стерилизация шовного материала достигается разными способами: термическим, химическим, гамма-облучением. Нити хранятся в стерильном виде в пластиковых упаковках или упаковках из алюминиевой фольги. Выпуск и стерилизация шовного материала в упаковке для многократного применения нежелательны. По строению нити могут быть монофиламентными (монолитные), кручеными или плетеными. Более целесообразно использовать монофи-ламентные синтетические нити, которые из-за отсутствия фитильного эффекта препятствуют распространению инфекции. В атравматических иглах (не имеют ушка) конец нити заделывается в полый тупой конец иглы. Шелковые нити являются естественным продуктом; в настоящее время выпускают также синтетический шелк. Они изготавливаются плетеными либо кручеными и имеют выраженный фитильный эффект, т. е. способность переносить жидкость и содержащиеся в ней бактерии; их преимущество — большая прочность. Шелк не рассасывается. Толщина шелковых нитей различна, от 00 до 16 (чем больше номер, тем толще нить). В настоящее время медицинской промышленностью в отдельных случаях еще выпускается шелк в мотках для многократного применения, Стерилизацию шелка в подобных случаях производят следующим образом. 1. Мотки шелка моют в теплой воде с мылом, затем высушивают. Намотанный на катушку шелк опускают в эфир на 12—24 ч для обезжиривания. После извлечения стерильным инструментом из эфира шелк погружают на тот же срок в 70% этанол, после чего шелк кипятят 10 мин. Хранят стерильный шелк в герметически закрытых банках с 95% этиловым спиртом (метод Кохера). Перед употреблением подготовленный по данной методике шелк повторно кипятят 2 мин. 2. Мотки шелка раскручивают и моют два раза в мыльной пене, после чего несколько раз прополаскивают в теплой воде, сушат и наматывают на стерильные катушки. Обезжиривают в эфире в течение 12— 24 ч, после чего кипятят в дистиллированной воде 45 мин. С помощью стерильных инструментов шелк погружают в герметически закрытые банки с 95% спиртом на 6—12 ч, после чего он пригоден к применению. В герметических банках спирт меняют через каждые 7 дней. Капроновые и лавсановые нити многократного применения стерилизуют в паровом автоклаве, как операционное белье, или кипячением, как инструменты в течение 45 мин. Нерастворимые атравматические нити из искусственных синтетических волокон изготавливают из полиамидных (найлон, капрон, перлон, супрамид) или полиэфирных (дакрон, мерсилен, тефлон) волокон. Они превосходят естественные нити по прочности и отсутствию реакции тканей, стерилизуются гамма-облучением или окисью этилена. Кетгут является материалом органического происхождения. Изготовляют кетгут из подслизистого слоя тонких кишок крупного рогатого скота или свиней. Как гетерогенный белок, он может вызывать сильную реакцию тканей. Преимуществом кетгута является то, что через 6—12 дней он резорбируется в организме. За счет хромирования (хромированный кетгут) резорбция кетгута в организме может быть продлена до 15—40 дней. Задубленный кетгут не токсичен. Хромированный кетгут выпускается в ампулах или в упаковке из алюминиевой фольги с консервирующим раствором (спирт ректификат 96% 89 мл, глицерин 6 мл, бензин авиационный 1 мл, вода дистиллированная 4 мл), стерилизация гамма-облучением. Полимеры гликолевой кислоты (дексон) или полипропилен (пролен), а также викрил являются искусственными рассасывающимися нитями. Рассасывающиеся синтетические нити имеют преимущество перед кетгутом, особенно при работе в инфицированной ране. Металлические скобки и шовные нити из стали имеют повышенную прочность, стерилизуют их термическим способом (кипячением) или гамма-облучением. ДЕЗИНФЕКЦИЯ Дезинфекция достигается с помощью химических и физических методов. Под физическими методами понимают использование сухого жара или водяного пара, кипячение, ультрафиолетовое облучение. Наиболее наглядным примером применения их является использование водяного пара под повышенным давлением для дезинфекции матрацев и термолабильных текстильных изделий. Для этого используют специальные пароформалиновые камеры. Для химической дезинфекции установлены следующие требования: надежное и быстрое действие против всех патогенных микроорганизмов, устойчивость растворов на воздухе и на свету, безвредность для человека и животных, хорошая переносимость материалов и полезный эффект при наименьшей концентрации. Следует принять во внимание, что универсального дезинфицирующего средства не существует. Кроме раствора йода спороцидным действием обладает только надуксусная кислота (дезоксон-1). В последние годы в области дезинфекции разрабатываются новые принципы, однако по-прежнему основное значение имеет хирургическая дезинфекция рук и дезинфекция операционного поля. ^ Целью хирургической дезинфекции рук является надежное освобождение их от микроорганизмов на длительный срок. Подготовка рук хирурга и его помощников к операции сопряжена с большими трудностями в связи с невозможностью использовать для этого высокую температуру и концентрированные растворы антисептиков. Особое затруднено обеззараживание рук от микробов, скапливающихся в выводных протоках сальных, потовых желез и в волосяных мешочках. В связи с этим наряду со смыванием бактерий и уничтожением их на поверхности кожи антисептиками все методы включают как обязательный компонент дубление кожи, чтобы сузить поры и воспрепятствовать проникновению этих микробов на ее поверхность во время операции. Очень важны уход за руками и предупреждение их загрязнения. Стремление оградить кожу рук от различных травм, повреждений и загрязнений должно являться предметом постоянной заботы для тех, кто участвует в операции; ногти всегда должны быть коротко пострижены и чисты. Принцип хирургической дезинфекции рук — сначала механическая очистка, а затем дезинфекция. Кисти и предплечья предварительно обрабатывают в течение 2—5 мин мылом и щеткой. Особое внимание уделяют обработке ногтевых лож, складок кожи, межпальцевых промежутков. После этого руки ополаскивают и вытирают стерильными салфетками. На заключительном этапе используют дезинфицирующие средства, которые должны отвечать следующим требованиям: 1) быстро убивать патогенную микрофлору; 2) надежно убивать микробы в перчаточном соке, чтобы руки оставались обеззараженными в течение всей операции; 3) обладать кумулятивным действием, чтобы руки хирурга оставались обедненными микроорганизмами и в промежутках между процедурами дезинфекции; 4) не оказывать раздражающего действия на кожу. Классические способы обработки рук по Фюрбрингеру (Р. Furbrin-ger, 1897), Спасокукоцкому—Кочергину (1929) и другие в настоящее время оставлены, так как они занимают много времени. Применяются ускоренные методы хирургической дезинфекции рук. /. Обработка рук раствором перекиси водорода и муравьиной кислоты (1970). Рецептуру «С-4» готовят в день операции из необходимого количества 30—33% перекиси водорода (пергидроля) и 85—100% муравьиной кислоты, которые смешивают в стерильном сосуде в соотношении 1 : 2,4 и хранят не более суток в посуде с герметической пробкой в прохладном месте. Для обработки рук используют 2,4% раствор рецептуры «С-4». Перед обработкой рук раствором рецептуры «С-4» их моют водой с мылом (без щетки) в течение 1 мин, вытирают насухо стерильной салфеткой, затем руки обрабатывают в течение 1 мин рецептурой «С-4» в эмалированном тазу, вытирают стерильной салфеткой и надевают стерильные перчатки (рис. 24, 25). 2. Обработка рук хлоргексидин биглюконатом (1977). Для обработки рук используют 0,5% спиртовой раствор препарата (препарат разводят в 70% спирте в соотношении 1:40). После предварительного мытья рук с мылом и последующего протирания стерильной марлевой салфеткой производят их обработку двумя ватными тампонами, смоченными в 0,5% спиртовом растворе хлоргексидина, в течение 2—3 мин. Возможна обработка рук и 1% водным раствором (1:20) хлоргексидина в стерильном тазу в течение 3 мин. Рабочий раствор готовят, разводя 500 мл 20% оригинального раствора препарата в 10 л дистиллированной воды. 3. Обработка рук моющими средствами (1960). После предварительного мытья рук с мылом их на 3—5 мин погружают в таз с моющим средством (ОП-7, «Новость», «Астра»). Раствор моющих средств готовят непосредственно перед применением (1 столовая ложка порошка на 3 л теплой воды). После высушивания рук стерильной салфеткой их протирают в течение 3 мин 95% этанолом. 4. Обработка рук дегмином и дегмицидом (1968). Руки перед обработкой дегмином или дегмицидом моют теплой водой с мылом в течение 2—3 мин, тщательно ополаскивают их и протирают двумя тампонами, обильно смоченными 1% раствором препарата, по 3 мин каждым. После этого стерильными салфетками вытирают руки насухо и надевают стерильные перчатки. 5. Обработка рук церигелем (1971). Препарат содержит цетилпирииний хлорид — катионный детергент, обладающий большой поверхностной активностью Бесцветная опалесцирующая жидкость церигеля, нанесенная на кожу, после испарения спирта образует тонкую плотную асептическую полимерную пленку (воздействие поливинилбутираля). После предварительной обработки рук мылом на сухую кожу наносят 3—4 г церигеля и в течение 8—10 с тщательно растирают так, чтобы препарат покрыл ладонные и тыльные поверхности, межпальцевые промежутки и дистальную треть предплечья. Руки высушивают на воздухе или под вентилятором в течение 2—3 мин, следя за тем, чтобы пальцы не соприкасались и были слегка согнуты. Способ обработки рук эффективен в эсренных ситуациях, во время работы в перевязочной, при первичной хирургической обработке ран и т. п. Полимерная пленка смывается с рук после операции или манипуляции 95% этиловым спиртом. 6. Обработка рук йодофором (1972). Очень эффективным и быстрым способом является обработка йодофором (1% йодопирон-поливинилпиролидон, повидон-йодин-бетадин) и гексахлорофеном в мыльном растворе (шампунь) в течение 3—5 мин. Одновременно достигается очистка и дезинфекция кожи рук, после чего их высушивают салфеткой и надевают стерильные перчатки. 7. Обработка рук ультразвуком. Сконструированы специальные аппараты с ультразвуковыми ваннами, в которых мытье и дезинфекция рук происходит в течение 1 мин. Руки погружают в раствор антисептика (0,05% водный раствор гибитана), через который пропускаются ультразвуковые волны, которые и обеспечивают дезинфекцию. ^ Медицинский персонал (хирург, ассистенты, операционные сестры) после хирургической дезинфекции рук надевают стерильные (свободные от микроорганизмов) халаты, покрывающие также руки до кисти и спину. Для операционных халатов не подходит рыхлый текстильный материал, многократно бывший в употреблении, так как он становится проницаемым для пота и бактерий, содержащихся на коже членов операционной бригады (появляются на халате уже через 30 мин работы). Лучше всего использовать белье и халаты из плотного импрегнированного хлопчатобумажного материала (рис. 26). Манжеты костюма и завязки должны быть эластичными и не сдавливать запястья и кисти. Маска должна плотно закрывать рот и нос. После хирургической дезинфекции рук микроорганизмы на коже отсутствуют. Однако вскоре из протоков потовых желез, волосяных мешочков, микротрещин на поверхности кожи снова появляются микроорганизмы, поэтому с целью асептического проведения операции необходимо изолировать руки стерильными резиновыми перчатками (рис. 25). При надевании перчаток нельзя притрагиваться к их наружной поверхности оголенной рукой. Во время работы в перчатках руки становятся влажными, в перчатках скапливается так называемый перчаточный сок, который содержит концентрат вирулентной микрофлоры, поэтому и перед операцией и во время ее необходимо обращать пристальное внимание на целость перчаток. Поврежденную перчатку необходимо тотчас же сменить. Если операция продолжительна, во время работы через каждые 45—60 мин перчатки обрабатывают 2,4% раствором первомура и протирают 96% этиловым спиртом. Чтобы перчатки легко снимались и надевались, кисти и внутреннюю поверхность перчаток следует обработать стерильной пудрой. Пудра, изготовленная на основе крахмала, полностью резорбируется, поэтому она имеет преимущество перед тальком.  Рис. 25. Надевание хирургических перчаток  Рис. 26. Схема надевания хирургического халата ^ Подготовка операционного поля начинается в предоперационном периоде (гигиеническая ванна, очистка загрязнений эфиром или бензином, обработка кожи зеленым или калиевым мылом, бритье волос в области операционного поля). Для обработки кожи операционного поля в настоящее время чаще всего применяют йодонат, йодопирон, хлоргексидин биглюконат. Рабочий раствор йодоната готовят ex tempore путем разбавления исходного раствора в 4,5—5 раз кипяченой или стерилизованной водой. Кожу операционного поля без предварительного мытья спиртом обрабатывают двухкратным смазыванием стерильными тампонами, смоченными раствором йодоната или йодопирона (1% по свободному йоду), либо 0,5 % спиртовым раствором хлоргексидина биглюконата. Как показали многочисленные исследования, содержащийся в спиртовом растворе йод дубит кожу, однако недостаточно дезинфицирует ее, поэтому этот метод, некогда традиционный, не применяют. Для обработки операционного поля используются и другие антисептические вещества (1% раствор дегмицида, 1% раствор роккала или катамина А—Б, 2,4% раствор первомура). Для дезинфекции слизистых их смазывают 1 % раствором бриллиантового зеленого, 3% раствором перекиси водорода, 1% раствором йодоната или йодопирона, а также 0,5% спиртовым раствором гибитана. Для изоляции кожи операционного поля применяют специальную стерильную пленку (протектор). ^ 1.4.1. Механическая антисептика 1.4.2. Физическая антисептика 1.4.3. Химическая антисептика 1.4.4. Биологическая антисептика ^ Механическая антисептика - это удаление механическим путём инфицированных и нежизнеспособных тканей. Из методов механической антисептики широко применяется первичная хирургическая обработка ран, направленная на превращение заведомо инфицированнойслучайной раны в антисептику, заживающую первичнымнатяжением. Первичная хирургическая обработка проводится в обязательном порядке во всех случаях (до 12-24 часов после получения) ран в асептических условиях. Предварительно в зоне раны сбривают волосы, удаляют остатки одежды, смывают грязь. Первичная хирургическая обработка это операция, включающая в себя 4 основных момента: рассечение раны, с целью превращения ее в резанную, т.е. расширение раневого канала до дна с таким расчетом, чтобы наружные размеры раны были равны глубине раны и давали возможность осмотреть раневой канал до дна. 2 этап – иссечение, края раны иссекают в пределах здоровых тканей одним блоком до дна с удалением всех инородных предметов в ране. После этого скальпель сбрасывают и работают после обработки перчаток новыми инструментами. 3 этап – остановка кровотечения из поврежденных сосудов, 4 – ушивание с наложением хирургических швов. При свежих ранах до 6 часов и незначительном их загрязнении применяют первичный хирургический туалет ран: промывание раны антисептическими средствами, обработка кожи вокруг раны, остановка кровотечения, ушивание раны. При уже гнойных ранах механическая антисептика включает в себя вскрытие гнойника или гнойных затеков, удаление струпов некрэктомия или их рассечение – некрэктомия, удаление из раны зоны некроза, промывание ран растворами антисептиков. ^ Физическая антисептика предусматривает применение широкого комплекса физических факторов и явлений, тесно связанных со всеми остальными видами антисептики. Все физические методы воздействмя на микроорганизмы можно разделить на 2 группы: 1) воздействующие непосредственно на микроорганизмы или создающие условия их выделения- сюда относится различные дренажи: марлевые- действие которых основано на гигроскопических свойствах марли и ваты, или марливые пропитанные гипертоническими растворами( 10% хлористого натрия) при том к гигроскопическим свойствам марли присоединяется высокое осмотическое давление, способствующее выведению экссудата из раны являющегося прекрасной питательной средой для микробов; применение резервных дренажей в виде полосок, трубок, полутрубок при этом происходит очень хороший отток из раны, а в некоторых случаях применяют через эти трубки и вакуум-аспирацию,что еще в большей степени усиливает дренирующие действие трубчатых дренажей. 2) группы методов физического воздействия воздействующая опосредованно через макроорганизм, вследствие усиления регенеративных процессов, кроме того, эти методы также воздействуют бактериологически или бактериостатически непосредственно на микроорганизмы: сюда относятся практически все физиотерапевтические методы: ультрафиолетовое облучение, воздействующее как на бактерии, так и улучшающее кроваток в области раны, ультразвук – также воздействует на бактерии, улучшает кроваток, активизирует микроволновая терапия в виде УВЧ, ДМВТ (дециметроволновая) СМТ (сантиметровая) усиливает микроциркуляцию в области раны, способствует рассасыванию патологического экссудата, в результате этого раны не только быстро очищаются от некроза, но и лучше и быстрее заживают. ^ Химическая антисептика – предусматривает применение химических препаратов, действующих на микроорганизмы бактериологически (разрушает их) или бактериостатически (нарушает процесс деления их). Применяются препараты в огромном количестве и они разделяются на несколько химических групп. Наиболее широко применяются галогеносодержащие химические препараты, которые в настоящее время являются самыми активными по отношению в большинству микроорганизмов. В практическом здравоохранении широко применяются практически все галоиды (фтор, хлор, бром, йод). Наибольшими антисептическими свойствами из этой группы обладают хлорсодержащие препараты: хлорамин, применяемый для стерилизации рук после осмотра гнойного больного, для стерилизации смотровых инструментов, обработки больничной мебели, стерилизация смотровых перчаток, а в последнее время для промывания полостей гнойных, например полости эмпиемы плевры применяют 1% растворов хлорамина; хлоргексидин (применяются водный 1% раствор или 0,5% растворов в 70% спирте – гибитан) самый современный антисептик, широко применяемый для стерилизации рук, инструментов, особенно режущих и оптических систем, обработки операционного поля, водные растворы для промывания полостей; пантоцид – препарат содержит до 50% свободного хлора, выпускается в виде таблеток и применяют для обеззараживания воды (15 мин); 0,1-0,5% растворы для промывания ран и полостей, 1-5% растворы для стерилизации рук и спринцеваний. Широко для дезинфекции белья, посуды, предметов ухода применяются традиционные препараты хлорной извести в виде растворов или засыпок. Из препаратов йода не утратило своего значения применение спиртового раствора йода 1,2,5%, который применяется для обработки ссадин, кожи вокруг ран, раньше широко применялся для обработки операционного поля, но из-за большого количества ожогов 720 приказом МЗ СССР применение его с этой целью запрещено. Для обработки операционного поля и стерилизации рук применяются 1% растворы йодопирона и йодоната. Эти препараты и более активны в отношении современной микрофлоры (золотистого стафилококка, протея, синегнойной палочки). Активность объясняется присутствием не только йода, но и поверхностно-активных моющих веществ. Йодинол- препарат синего цвета, содержит до 1% йода в многоатомном спирте. Применяют для полоскания рта и глотки, лечения плохо заживающих ран и язв, термических и химических ожогов. Из группы окислителей наиболее широко применяется перекись водорода, которая применяется для промывания ран и полостей. Высокий вспенивающий эффект способствует быстрому выносу инородных тел из глубины раны, отторжению некроза, что позволяет наряду с хирургическими антисептиками свойствами признать 3% перекись водорода как механический антисептик: Марганцево-кислый калий, (калия перманганат) применяют в виде свежеприготовленного раствора розового цвета для промывания ран и полостей, полости рта и горла, спринцевания, смазывания язв; пролежней, мокнувших поверхностей, т.к. перманганат калия обладая высоким окисляющим, действием способствует и подсушиванию раневой поверхности. Сам кислород также сейчас широко применяется в барокамерах при давлении т.е. с использованием элементов физической антисептики. Сеансы в 1 час при давлении в 1-1;5 избыточных атмосфер способствую насыщению тканей кислородом, улучшению трофики тканей, снятию отеков, а сам кислород оказывает повреждающее бактериостатическое действие на самую тяжелую микрофлору, особенно анаэробную, и является одним из основных способов её лечения. Вторым методом применения кислорода для лечения ран и явз является применение его в гнотобиологических палатках, без применения избыточного давления. Кислоты: из них широко применяют салициловую кислоту (аспирин) в виде присыпок (некролитический эффект), раствор водных и спиртовых мазях, пастах (Лассара, камфоцин, гальманин, мозольная жидкость). Салициловая кислота обладает кератолической активностью, т.е. способность рассасывать и способность отторжению струпов, мозолей – с её помощью проводят химическую некрэктомию при ожоговых струпах, плотном неотторгаемом гнойно-некратическом стержне при фурункулах и других гнойных заболеваниях мягких тканей. Из кислот с антисептической целью применяют борную кислоту, которая используется в виде присыпок, мазей 1-2%, растворов водных и спиртовых. Применяется для промывания полостей, полоскания рта и горла, промывания глаз, присыпания. Борная кислота особенно активна против синегнойной палочки, по сути, дело является единственным антисептиком против этого микроорганизма. Кроме того, она обладает дезодорирующими свойствами устранения неприятные запахи гноя. Основания: из них наиболее широко используют нашатырный спирт в различных концентрациях от 0,5% до 10% применяют для обработки рук перед операцией, хирургического туалета язв (мытье в нашатырном спирте), антисептик к которому не могут привыкнуть микроорганизмы из-за его способности разрушать их кислотоустойчивую оболочку. Этот препарат, не смотря на применение его вот уже в течение 100 лет не теряет своего значения. Другие основания применяются в сочетании с другими антисептиками для усиления их действия. Соединения тяжелых металлов. Эти препараты хотя и применяются, но в последнее время активность их против современных микроорганизмов стала, несомненно, слабее и многие препараты этой группы сейчас не применяются. Сулема (ртути гидрохлорид) применяют в виде растворов 1:1000 для дизинфекции белья, обмывания стен, дезинфекции кожи, некоторых кожных заболеваниях, Растворы должны быть скрашены в розовый цвет. Мазь ртутная серая применяется для лечения вшивости, паразитарных заболеваний кожи, кожных форм сифилиса. Мазь ртутная желтая (окись ртути) применяют в глазной практике при блефаритах, тоже очень ограниченно. Чаще используют препараты серебра азотнокислого в виде 1-10% растворов. Препарат обладает бактерицидным действием и прижигающим. Назначают в виде водных растворов, мазей, ляписных карандашей при эрозиях, язвах, избыточных грануляциях, трещинах. Для промывания мочевого пузыря, спринцеваний используют препараты серебра – протаргол и колларгол. Из тяжелых металлов широко применяют, но не с антисептической целью препараты свинца, цинка, меди. Из органически соединений: находят применения альдегиды: формалин в виде лизоформа, формидрона для уменьшения экссудации, потливости. Из альдегидов наиболее широко в хирургической практике применяются гексаметилентетрамин (уротропин) 40% раствор которого вводят внутривенно и в кислой среде он разлагается до формалина и выделяется почками являясь преимущественно уросептиком, но и широко применяются в неврологии как нейроантисептик при менингитах, арахноидитах, энцефалитах. С этой же целью используют таблетированные формы препарата – уросал, уробесал, кальцекс. Для лечения ран используют только один препарат из группы альдегидов – циминаль в виде суспензии или порошка, который в основном действует на протей и синегнойную палочку. Спирты: - наиболее широко как антисептик используется этиловый спирт в виде 96 и 70% раствора, как в чистом виде так и с различными добавками других антисептиков. Необходимо помнить, что 96% спирт обладает бактериологическим действием из-за дубящего и коагулирующего действия на бактерии, а 70% спирт бактериостатическим и литическим действием за счет проникновения в полость клетки микроорганизма. Фенолы: - карболовая кислота или фенол в чистом виде практически не используют, различные препараты (трикрезол, ферезол, резорцин) используют для лечения кожных заболеваний, особенно грибковых. В сочетании с салициловой кислотой и сульфаниламидами (салол, уробесал, тансал, бесалол) применяют при колитах, энтероколитах, заболеваниях почек и мочевого пузыря. Из этой группы в гинекологической практике применяют при эрозиях, воспалительных заболеваниях. Применяют ваготил в виде тампонов или спринцеваний. Красители: - метиленовый синий – применяют водные и спиртовые растворы в виде антисептических повязок, используют для промывания ран и полостей, вводят внутривенно при сепсисе и мочевой инфекции. Бриллиантовый зеленый – 1-2% спиртовой раствор применяют для обработки кожи и ссадин, пиодермий. В виде смеси с коллодием используют жидкость Новикова для наложения самоотвердевающих пленочных повязок. Риванол - (этакридина лактат) в виде водного раствора 1:500-1:1000 применяют в виде антисептических повязок, для промывания полостей и ран. Риванол в сочетании с медом и рыбьим жиром применяют в виде мази Конькова при гнойных гранулирующих ранах и гнойничковых заболеваниях кожи, а также при мокнущих язвах и ожогах. Детергенты: - препараты новой группы являются мощными антисептиками действующими практически на все группы микробов. Обладают хорошей всасываемостью, формированием пленки над раной и моющим свойством. Церигелы - применяют для подготовки рук хирурга к операции, закрытия ран и язв. Препарат равномерно размазывают салфеткой по стерилизуемой поверхности в течение 8-10 секунд при этом образуется прозрачная пленка, обладающая высокими бактерицидными свойствами. Дермицид – используют для обработки хирурга и операционного поля, препарат разводят в соотношении 1:30 в обычной водопроводной воде. Кожу обрабатывают в течение 2-3 минут двумя тампонами. Этоний: - препарат обладающий детоксицирующим действием против токсинов стафилококка, отличается высоким бактериолитическим и статическим действием. Применяют при трещинах сосков, заднего прохода, гнойных язвах, пролежнях и ожогах. Роккал: - препарат широчайшего спектра действия, губительно действует не только на грамм-положительную и отрицательную микрофлору, но и против вирусов и грибков. Применяется для обработки рук хирурга (2 мин), операционного поля, стерилизации инструментов, резиновых изделий, вводят с повязками в раны, промывают полости. Диоксидин: - внутривенно, местно при любой микрофлоре т.к. обладает широким спектром действия практически и на все микроорганизмы, не раздражает тканей. Фитонциды – в последнее время снова обратились к этой группе препаратов, отличающиеся активностью к современным микроорганизмам, особенно на стафилококк, поэтому их хорошо используют для лечения ран и язв: хлорофиллипт – суспензия хлорофилла листьев растений в воде или 2% спирте, используют при стафилококковой инфекции местно и внутривенно при сепсисе. Широко применяются сок коланхоэ, сок алое, облепиховое масло и масло шиповника (каротолин), отвары календулы, чистотела. К этой же группе относят и препараты животного происхождения: эктерицид (препарат, полученный из рыбьего жира), лизоцим (из слюнных желез, особенно собак). Сульфаниламиды – Большая группа препаратов бактериостатического действия на граммположительную и граммотрицательную микрофлору,некоторые простейшие (малярия, токсоплазмоз). По времени выделения из организма сульфаниламида делят на 4 группы: Короткого действия: стрептоцид, норсульфазол, этазол, сульфадимезин и др.; среднего срока: сульфазин, бисептол, бактрим и др.; длительного: (пролонгированного) действия: сульфапиридазин, сульфадиметоксин, сульфаленометоксин, сульфален). Нитрофураны: - препараты нитрофуранов оказывают бактериостатическое действие на грамм + и грамм –микроорганизмы, некоторые вирусы, трихомонады, лямблии нечувствительные к действию антибиотиков и сульфаниламидов. Препараты применяют местно и для общего лечения в виде таблеток, капсул. Местно применяют раствор фурацилина 1:5000 для промывания ран, язв, спринцеваний, повязок, трещин. Фурациллин применяют в мазях: фастины, лифузоль. Таблетированные препараты наиболее активны при мочеполовой инфекции: фурадонин, фуразолидон, которые назначаются по 0,1х3 раза в день. Производные оксохинолина. Обладают очень высокой бактерицидностью в отношении практически всей микрофлоры (граммположительные, граммотрицаные, паразиты, вирусы, грибки, простейшие). Наиболее широко из этой группы препаратов с антисептической целью применяют энтеросептол при инфекционных заболеваниях кишечника, т.к. он действует место в кишечнике, мексаформ, который отличается избирательным действием на патогенную микрофлору кишечника, но не оказывает действия на сапрофиты, интестопан, который применяется с этой же целью. Нитроксолин (5-нок) в основном выводится почками, поэтому применяют при мочеполовой инфекции. Препарат этой группы дермазолин (на мазевой основе) применяется при гнойничковых поражениях кожи, инфицированных экземах, грибковых заболеваниях кожи. Мы рассмотрели только небольшую группу химических антисептиков, наиболее часто применяемых в хирургии, хотя, в общем, эта группа антисептиков включает в себя более 4 тысяч наименований ^ Включает в себя комплекс мероприятий и препаратов биологического происхождения, которые или непосредственно действуют на микроорганизмы или повышают устойчивость тканей к инфекции. Из препаратов, которые действуют, непосредственно на бактерии наиболее широко применяются антибиотики. Это мощные препараты, которые действуют преимущественно бактериостатически, т.е. нарушают процесс деления бактерий. Наряду с положительными свойствами антибиотики обладают рядом отрицательных свойств, которые необходимо учитывать при назначении этих препаратов: способность вызывать аллергические реакции вплоть до анафилактического шока, угнетение естественного иммунитета, влияние на гемопоэз до развития лейкопении, действие их на абсолютно все микроорганизмы и патогенные и сапрофиты, необходимые микроорганизму часто вызывает формирование дисбактериоза; препараты токсичны сами по себе, особенно неблагоприятно они действуют на нервную ткань, вызывая невриты (особенно слухового нерва – ототоксичность антибиотиков) и поражение почечной паренхимы (нефротоксичность антибиотиков) – в этом плане наиболее опасна группа аминогликозидов. При этом необходимо отметить, что чем дольше мы пользуемся антибиотиками, тем все больше выявляется побочных и неблагоприятных факторов антибитикотерапии, а вот чувствительность бактерий к этим препаратам все больше уменьшается из-за изменения характера самой микрофлоры и ее способности приспосабливаться к антибиотикам и выделять специальные ферменты их разрушающие. К биологической антисептике относится иммунотерапия, т.к.гнойные процессы сопровождаются угнетением иммунитета. Активная иммунизация основана на введении различных сывороток, содержащих токсические продукты распада определенных микроорганизмов или ослабленные и фиксированные микробы. Она проводится с целью профилактики инфекции (противостолбнячная, противогангренозная, коклюшно-дифтерийная и мн. др.). Пассивная иммунизация основана на введении готовых антител сенсибилизированных к определённому возбудителю. При стафилококковой инфекции применяют с целью пассивной иммунизации антистафилакокковую плазму (прививают донора сывороткой и через 2 недели берут кровь, из которой после отстаивания отсасывают плазму), стафилококковый антифагин, анатоксин, гаммаглобулин. Стафилококковый бактериофаг применяют местно. Практически сейчас имеются анатоксины и бактериофаги против каждого патогенного микроорганизма. Энзимотерапия. Применение протеолитических ферментов, получаемых их активных тканей животных (поджелудочная железа) или протеолитические ферменты микроорганизмов. Из поджелудочной железы получают или очищенные ферменты (трипсин, химотрипсин, химопсин, дезоксирибонуклеазу) или применяют неочищенный аморфный трипсин. Эти препараты используют местно в виде присыпок, растворов, путем обкалывания, вводят внутримышечно и внутривенно. Ферменты переваривают некротические ткани и способствуют их быстрейшему отделению. Рана очищается в 2-3 раза быстрее. На здоровые ткани они не действуют, т.к. они богаты ингибиторами протеаз, которые нейтрализуют их действие. Из микроорганизмов в последние годы получен первый протеолитический фермент-клостридиопептидаза А, которая также переваривает и разрушает некротические ткани. Пока этот фермент используется только в одном препарате – Ируксол это мазь клостридиопептидазы А и левомецитина. 2. Десмургия. 2.1. Общие вопросы десмургии. 2.2. Повязки на различные области тела. 2.1. Общие вопросы десмургии. Десмургия (греч. desmos привязь, связь, повязка + ergon дело, выполнение) |
Ваша оценка этого документа будет первой.
Ваша оценка:
Похожие:
База данных защищена авторским правом ©MedZnate 2000-2016
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям