Удк 621. 357: 541. 13 В. И. Прилуцкий, В. М. Бахир электрохимически активированная вода: аномальные свойства, механизм биологического действия москва, 1995
|
|
Скачать 2.86 Mb.
|
| самой воды, а не присутствующих в ней минеральных компонент. Показателем условий электрохимической обработки и активации воды является предложенный Е.А.Репетиным коэффициент электрохимического преобразования (Кэп), который позволяет оценить интенсивность (глубину) электрохимических преобразований водной среды в зависимости от минерализации и определяется выражением: Кэп = IQ1C1F1 (15) где I - сила тока, А ; Q - объемная скорость протекания воды через электрохимический реактор, л/с ; С - исходная минерализация воды, моль/л ; F - число Фарадея, приблизительно равное 96500 Кл/моль. Для электролизеров статического типа Кэп определяется выражением: Кэп = ItV1C1F1 (16) где t - продолжительность электрохимической обработки, с ; V - объем электродных камер электролизера (анодной или катодной), л ; прочие обозначения см. формулу (15). Из формулы (15) следует, что, при прочих равных, Кэп возрастает обратно пропорционально С. В случае электрохимической обработки с минерализацией менее 0,2 г/л роль структурных аномалий собственно воды и неустойчивых суперактивных ионов, молекул и свободных радикалов существенно преобладает по показателям физиологической активности над факторами стабильных продуктов электрохимического превращения. По мере увеличения параметра С физиологическая значимость метастабильных характеристик ЭХА-растворов заметно снижается и возрастает значимость стабильных продуктов электролиза. Японская вода с незначительным содержанием солей пригодна для получения анолита и католита, являющихся активированными по признакам метастабильности. Но она обладает низкой электропроводностью, что не позволяет достигнуть высоких значений тока в электролизерах с большим расстоянием между электродами. Японские установки для производства “ионизированной воды” имеют значительное межэлектродное пространство, в котором электролиз проходит при низкой напряженности электрического поля (порядка 102-103 В/см). В этом случае активация водной среды ограничена в ту меру, в какую ограничена величина удельного расхода электричества, затраченного на процесс электрохимической обработки. При увеличении времени электролиза удельный расход электричества, на единицу объема обработанной воды теоретически может быть сколь угодно большим. Соответственно, в водной среде с низкой и даже сверхнизкой минерализацией могут быть достигнуты экстремальные значения рН и ОВП. Такие же значения рН и ОВП достигаются при электрохимической обработке воды при большем значении тока, но за меньшее время. Свойства ЭХА-растворов с равными показателями рН и ОВП при значительных различиях степени их минерализации трудно сопоставимы. Поэтому дозы и продолжительность курса питья японской деминирализованной “щелочной воды” нельзя сравнивать с терапевтической схемой приема внутрь ЭХА-растворов с высокой минерализацией, получаемых на ташкентских электроактиваторах “Эсперо”. Минерализованная вода объемом V л, статическим или протекающим в единицу времени, при уровне минерализации С моль/л содержит массу минеральных соединений (М), равную VC . Если во всем объеме раствора содержится 1 моль солей (например, хлорида натрия), то для полного электролиза этой минеральной компоненты необходим расход 96500 Кл электричества. Для полного электролиза массы М минеральных соединений в произвольном объеме воды необходимо количество электричества, равное 96500М Кл, что соответствует 96500С Кл/л. Например, физиологический раствор хлорида натрия имеет уровень минерализации 0,15 моль/л. Для полного электролиза солей в составе физиологического раствора требуется расход электричества 14475 Кл/л. Аналогичный расчет показывает, что для полного электролиза солей в питьевой воде минерализацией (0,2-0,3 г/л, что эквивалентно 0,0025-0,005 моль/л ) требуется расход электричества приблизительно 250-500 Кл/л. Для полного электролиза минеральных компонент, присутствующих в деминирализованной воде в концентрации 2104 моль/л ( = 25 мкСмсм1), требуется расход электричества около 20 Кл/л. Если при электрохимической обработке водно-солевой среды удельный расход электричества (I : Q = q Кл/л или It : V = q Кл/л ) меньше расчетной величины 96500С Кл/л или, соответственно, 96500М, то Кэп 1,0. Это указывает на относительно малую вовлеченность молекул (растворителя) воды в процесс электролиза, поскольку количество молей электрохимически преобразованных веществ в каждом литре воды, прошедшей обработку в реакторе, меньше количества молей электролитов в том же объеме исходной воды. В электролизерах проточного типа величина q может быть изменена или увеличением I за счет повышения напряжения тока или регулируемыми изменениями Q. В электролизерах статического типа величина q легко регулируется изменением времени работы электрохимического устройства. Таким образом существующие технические средства в принципе способны обеспечить режим электрохимической обработки, при котором Кэп 1,0. В этом случае количество молей электрохимически модифицированных веществ превышает количество молей растворенных в воде электролитов, что указывает на высокую степень вовлеченности молекул самой воды в процесс электрохимического разложения. Медицинский центр ташкентской фирмы “Эсперо” использует для лечебных целей католит водно-солевых растворов высокой минерализации, для которых по условию Кэп 1,0. Японская фирма Ionica Co, Ltd рекомендует для оздоровительного питья католит ультрапресной питьевой воды, полученный в режиме электрохимической обработки, при котором вероятны значения Кэп 1,0. Следовательно, японская “ионизировання вода” лучше соответствует определению ЭХА воды. Значения рН японского католита питьевой воды (рН =10,5) и ташкентского католита физиологического раствора (рН = 10 + 0,6), предназначенного для восстановительной терапии (например, при язве желудка и 12-перстной кишки), почти совпадают. Однако рекомендуемые дозы для этих разновидностей католита существенно различны, что, повидимому, связано с их физико-химическими и фармакологическими особенностями. Для сравнения биологической активности католита физиологического раствора хлорида натрия и воды, приближающейся по минерализации к дистиллированной, проводили тестирование указанных ЭХА-сред по показателю подвижности размороженных сперматозоидов. Ниже приводим описание этого эксперимента. Элемент ПЭМ со специальным защитным покрытием рабочих камер подключали к источнику тока Б5-47. В катодную камеру с помощью перфузионного насоса подавали тестируемую водную среду в режиме протекания со скоростью 40 мл/мин или 0,00067 л/с. В анодную камеру в капельном режиме ( 1 кап/с) подавали компенсирующий 0,3% раствор хлорида натрия. В качестве тестируемых сред использовали дистиллированную воду и физиологический раствор хлорида натрия. В контрольных экспериментах подачу водных сред в катодную камеру ПЭМ осуществляли при выключенном токе. В основных экспериментах дистиллированную воду или физиологический раствор хлорида натрия обрабатывали в катодной камере током силой 0,03 А. Контрольные и основные пробы на выходе катодной камеры ПЭМ исследовали по показателям рН, ОВП, и интегральной подвижности клеточного тест-объекта (Is). Полученные результаты представлены в табл. 8.1. Таблица 8.1 Биологическая активность образцов католита водных сред с различными значениями Кэп. _______________________________________________________________ Тестируемые пробы : : q : Кэп : рН : ОВП : Is мСмсм1 Кл/л мВ,ХСЭ % _______________________________________________________________ Дистиллированная вода, контроль 0,01 0 0 5,1 250 96 Физиологический раствор, контроль 17,0 0 0 5,5 310 98 Католит дистиллиро- ванной воды 0,025 45 2,3 10,0 -180 110 Католит физиологи- ческого раствора 17,0 45 0,003 8,1 -100 95 _______________________________________________________________ Примечание: повышение электропроводности католита дистиллированной воды, повидимому связано с электроосмотическим переносом катионов из анодной камеры. В разделе 4.2 было показано, что увеличение удельного расхода электричества при катодной обработке водных сред до 90 Кл/л создает в них условиях, несовместимые с подвижностью размороженных сперматозоидов. В данном эксперименте катодная обработка водных сред проводилась при удельном расходе электричества 45 Кл/л, что создает оптимальные условия для подвижности жгутиковых клеток. Католит дистиллированной воды, полученный на элементе ПЭМ, стимулирует подвижность размороженных сперматозоидов приблизительно на 15% относительно исходной дистиллированной воды, исходного физиологического раствора и католита физиологического раствора. Такой католит по минерализации и характеристикам рН близок к “щелочной ионизированной воде”, вырабатываемой электролизерами фирмы Ionica Co, Ltd. Однако необходимо учитывать, что физические условия в работающем элементе ПЭМ кардинально отличаются от условий электрохимической обработки воды в электролизере статического типа, поэтому в данном случае для корректного анализа необходимы параллельные исследования на натурных образцах сравниваемых устройств. ЭХА-растворы в зависимости от уровня минерализации исходной воды характеризуются различными соотношениями факторов активности, условно показанными в табл. 8.2. Таблица 8.2 Соотношение факторов активности ЭХА-воды в зависимости от минерализации _______________________________________________________________ Тип воды Минерализация Соотношение факторов г/л электроактивации при Кэп = 1 _______________________________________________________________ Ультрапресная 0,3 Ф3 Ф2 Ф1 Пресная 0,3 - 1,0 Ф3 Ф2 Ф1 Слабосолноватая 1,0 - 3,0 Ф3 = Ф2 Ф1 Солноватая 3,0 - 10,0 Ф3 Ф2 Ф1 Соленая 10 Ф3 Ф2Ф1 _______________________________________________________________ Факторы Ф1,Ф2,Ф3, обозначенные в табл. 8.2, соответствуют: Ф1 - устойчивые химические соединения ЭХА-растворов (кислоты в анолите, щелочи в католите) ; Ф2 - неустойчивые (метастабильные) высокоактивные частицы ; Ф3 - структурные аномалии растворителя (воды). В соответствии с логикой табл. 8.2 активность электрохимически обработанных растворов соленой и солноватой воды определяется в наибольшей степени стабильными продуктами электролиза и в наименьшей степени - факторами активации собственно воды. По мере снижения минерализации в ЭХА-средах возрастает роль метастабильных высокоактивных частиц и структурной перестройки молекул воды. Увеличение Кэп способствует усилению активности фаторов Ф3. Медицинский центр фирмы “Эсперо” использовал для местной терапии (промывания, аппликации) анолит и католит соленой и солноватой воды, а для приема внутрь - анолит и католит пресной, слабосоленой и солноватой воды. При этом для растворов повышенной минерализации (до 9 г/л) объемы лечебных доз анолита и католита, предназначенных для питья, были существенно ограничены. По рекомендациям фирмы “Эсперо” для проведения курса общеукрепляющей терапии применялся католит пресной воды с содержанием солей около 0,3 г/л не более 210 мл в день в течение месяца. Повидимому, католит ультрапресной воды, получаемый в электролизере японской фирмы Ionica, отличается от католита пресной воды большей глубиной структурных модификаций собственно воды, что соответствует энергетической неравновесности водной среды без существенных химических превращений. Это обстоятельство снижает фармакологический риск и позволяет принимать католит ультрапресной воды внутрь продолжительное время в дозах, соизмеримых с суточным объемом обычной питьевой воды. Реальная степень активации воды в установке фирмы Ionica может быть установлена только в процессе медико-технических испытаний. Российский ГОСТ 2874-82 (“Вода питьевая”) ограничивает верхнее значение рН воды величиной 9,0. Поэтому полная земена питьевой воды католитом ультрапресной воды с рН 9,0 в условиях России юридически необоснована. Технология униполярной электрохимической обработки питьевой воды с помощью элементов ПЭМ дает возможность получения больших объемов ЭХА-воды в широком диапазоне значений минерализации, удельного расхода электричества и коэффициента электрохимической проработки с заданными показателями рН, ОВП, а также совместимости к биологическими объектами. На этой основе предстоит разработка отдельных стратегий лечебного применения ЭХА-сред с учетом характеристик минерализации, Сох (для анолита), рН, ОВП, q, Кэп, показателей элементного состава и степени релаксации активированного раствора. Воспроизводимость экспериментов с “живой” и “мертвой” водой зависит от правильности установки сочетаний 7 или 8 относительно независимых параметров, что требует соответствующего технического и лабораторного оснащения. Таким образом медико-биологические исследования в области ЭХА становятся самостоятельным научным научным направлением, которое должно развиваться в рамках общенациональной программы. 8.6. Ванны общие с католитом. По данным фирмы “Эсперо” общие ванны с католитом оказывают на организм тонизирующее, укрепляющее и восстанаваливающее действие. Продолжительность католитных ванн строго ограничена временем 6-7 мин. При погружении чаловека в ванну с католитом около 2/3 кожного кровотока осуществляется по участкам кожи, контактирующим с электронодонорной жидкой средой. При этом восстановительные значения ОВП передаются в кровь через кожные покровы. Кровоток через участки кожи, контактирующие с католитом, составляет ориентировочно 0,3 л/мин. Общий кровоток в организме 5,5 л/мин. При этих условиях и при продолжительности ванны 7 мин. приблизительно 1/3 объема циркулирующей крови (около 1,5 - 2 л) подвергнется чрезкожной обработке раствором, заполняющим ванну. После разведения жидкой фракции обработанной крови в объеме водного сектора организма около 4% внутренних водных сред будут хранить “память” о чрезкожном действии католита в ванне. Объем общей ванны 200-250 л. Чтобы заполнить такую ванну за 7 мин. нужна установка производительностью 30-35 л/мин. или около 2 м3/ч. Такая производительность обеспечивается установками СТЭЛ соответствующего типоразмера. Итоговая температура ванн не менее 33С. Частота проведения ванн с католитом - один раз в два-три дня. Курс лечения включает 10 ванн. При злоупотреблении католитными ваннами возможно общее ухудшение здоровья и нарушения деятельности сердца. 8.7. Применение ЭХА в экстремальной медицине. Опыт последних лет показал, что в очагах массовых катастроф существует потребность в больших объемах очищенной питьевой воды, а также водных сред медицинского назначения. В основном традиционные технические средства водоочистки отличает ограниченная эффективность, малая экономичность, необходимость в дополнительных реагентах. Наилучшие из этих методов - обратный осмос и дистилляция - имеют низкую производительность и не позволяют получать воду с заданными характеристиками рН и ОВП. Электрохимические методы обработки питьевой воды и способы получения ЭХА-растворов санитарно-гигиенического назначения лишены указанных недостатков. Малогабаритные установки “Изумруд” могут питаться от переносных источников тока и способны обеспечить получение большое количество кондиционированной воды биологически активной питьевой воды в полевых услловиях. ЭХА-растворы типа К, А, АН могут использоваться в экстремальной медицине для: - детоксикации организма; антиоксидантного воздействия на организм (питье католита, параэнтеральное введение жидких сред, приготовленных на катодно обработанной деминирализованной воде и т.д.) ; - детоксикации организма методом непрямого электрохимического окисления гидрофобных токсинов; - безреагентного приготовления в полевых условиях большого количества моющих, дезинфицирующих и стерилизующих растворов; - многократной отмывки диализаторов “искусственной почки” для повторного использования у одного и того же больного. В перспективе электрохимические методы должны быть использованы для создания полевых моделей аппаратов гемодиализа с полной регенерацией диализного раствора в замкнутом контуре. Особый интерес для экстремальной медицины представляют следующие свойства электрохимических активаторов: функциональный универсализм, малогабаритность, мобильность, экономичность, сравнительно низкое энергопотребление, возможность подключения к любым напорным источникам воды, энергопитание от передвижных источников тока, длительное функционирование без замены рабочих элементов, регулирование рН и ОВП водных сред в широком диапазоне. При катастрофах типа Чернобыльской или Аральской, при которых в среде появляется множество лучевых факторов или сильных окислителей, активированный католит, обладающий электронодонорными свойствами, представляется уникальным средством противолучевой и противоокислительной защиты. З А К Л Ю Ч Е Н И Е . Патоморфологическая картина поражений жизненно-важных органов при хронических заболеваниях или при возрастной дегенерации разнообразна, но она содержит один общий элемент - нарушение стабильности клеточных мембран, их биологический износ. Универсальная роль в патогенезе мембранно-клеточных поражений принадлежит свободным радикалам, которые вызывают деструкцию биополимеров. (47, 48, 85) Содержание свободных радикалов в организме повышено в тканях с интенсивным метаболизмом, при облучении, при наличии очага злокачественного роста, при старении клеток, а также в случае стресса и перенапряжения. Повышение содержания свободных радикалов в организме сопровождается уменьшением общей противоокислительной активности, в частности, снижением антиоксидантной активности липидных комплексов. Молодые активно пролиферирующие регенерирующие ткани характеризуются высоким уровнем противоокислительной активности. При введении в организм различных веществ, не образующихся в самом организме (в том числе лекарственных препаратов) , происходит образование реакционноспособных метаболитов, оказывающих токсическое действие в клетках. Это не пообочная реакция в основном оксигенационном цикле, а необходимая стадия процесса окисления, сопровождающаяся образованием токсических реакционных метаболитов в форме свободных радикалов. Модификация макромолекул под действием свободных радикалов обуславливает ряд патогенетических эффектов: цитостатический, канцерогенный, мутагенный, аллергический, токсический, иммунодепрессивный. (161) В сущности это и есть полная совокупность механизмов развития болезней внутренных органов, тканей и кожных покровов. Некоторые вещества - ингибиторы свободнорадикальных процессов, не обладающие сами по себе противоокислительной активностью, способны увеличивать антиоксидантные свойства липидов и усиливают радиопротекторный эффект эндогенных антиоксидантов. Ингибиторы радикалов, экзогенные антиоксидантные препараты в оптимальных дозах восполняют дефицит эндогенных противоокислителей и уменьшают масштаб поражений, связанных со свободнорадикальными реакциями. Передозировка экзогенных ингибиторов радикалов приводит к усилению эффекта облучения. Повидимому избыточные молекулы ингибиторы радикалов уязвимы для квантовых воздействий и сами становятся источником дополнительной радикализации. (85) Данный момент представляется важным. В разделе 4.5 показано, что система противоокислительной защиты организма является многокомпонентной, хорошо детерминированной. При этом выпадение хотя бы одного элемента антиоксидантной защиты нарушает работу всей системы. Следовательно, противоокислительная терапия должна быть комбинированной и точно адресованной. Дозы антиоксидантов не могут быть произвольными. В организм должны поступать те конкретные антиоксидантные препараты, которые предназначены для восполнения дефицита определенных соединений, рельно отсутствующих во внутренней среде. Так бесполезно насыщать организм токоферолом (витамином Е), если из антирадикальной биохимической цепочки выпал аскорбат. Равным образом бесполезно применять сверхдозы аскорбиновой кислоты или витаминов группы В, если в тканях имеется дефицит глутатиона и других SH-соединений. Если ОВП внутренних биологических сред выходит за пределы оптимального диапазона, то во всех случаях общая надежность антиоксидантной защиты организма будет низкой. Попытка искусственного форсирования введения в организм экзогенных антиоксидантов легко может привести к парадоксальному отрицательному эффекту. В то же время регулирование общего окислительно-восстановительного фона тканевой среды способно вызвать генерализованный эффект и оказать синхронное воздействие на все химические звенья антирадикальной цепи. Низкий, но постоянный уровень токсических липоперекисей в интактных тканях животных составляет 109 - 108 моль/мг в составе липидных фракций различных органов. В норме по содержанию липоперекисей на первом месте головной мозг и нервная ткань (нервы, сетчатка), далее (из числа изученных) в убывающем порядке - печень, сальник, селезенка, мышцы. При дыхании чистым кислородом, при физическом утомлении и при раздражении коэффициент кратности увеличения содержания липоперекисей относительно исходного уровня, принятого за 1,0, в тканях печени в целом и в митохондриях гепатоцитов достигет 10 + 0,5, в нервах, сетчатке, мышцах, сальнике 3 + 1. Существует хорошо выраженная положительная коррелятивная связь уровня продуктов перекисного окисления с интенсивностью тканевых процессов катаболизма и деградации. Напротив, преобладание анаболизма и процессов восстановления тканевых структур сопровождается усилением фона противоокислительной активности. (47,48) Следовательно, свободные радикалы с достаточным основанием претендуют на роль медиаторов повреждения в патогенезе молекулярной патологии. Продукты ПОЛ сопровождают всякую стресс-реакцию и являются неспецифическим компонентом общего адаптационного синдрома Селье. (162) В фазе стрессовой тревоги (alarm) происходит активация ПОЛ, в фазе адаптации преобладает ингибирование ПОЛ, при развитии стрессового истощения (exhaution) вновь происходит активация ПОЛ. В эксперименте на крысах показано, что эмоционально болевой стресс (ЭБС) активирует ПОЛ в тканях головного мозга, в частности в зонах синапсов. При кратковременном ЭБС изменения системы антиоксидантной защиты достаточны для нормализации уровня продуктов ПОЛ. При длительном ЭБС, приводящем к невротизации животных, повышенный уровень содержания продуктов ПОЛ в головном мозге сохраняется в отдаленные сроки, особенно в области синапсов. (163) Активация процессов ПОЛ нарушает структуру и функции клеточных мембран, изменяя степень гидрофильности и вязкости мембранных липопротеидов, а также степень олигомеризации мембранных белков и характер их взаимодействия с липидами. Одно из следствий активации ПОЛ - изменение условий функционирования рецепторных и синаптических комплексов и нарушение качества передачи нервных импульсов. Снижение электронодонорных свойств клеточных мембран, в результате действия продуктов ПОЛ, уменьшает их способность нести отрицательный электрический заряд, необходимый для правильного контактного взаимодействия клеток. Очевидно, что при самой спокойной, размеренной и обеспеченной жизни взрослый человек вынужден в течение дня утилизировать не менее 3000 пищевых килокалорий и поглощать 200-250 мл кислорода в минуту. При этом в организме неизбежно происходит образование липоперекисей и других агентов радикального окисления. Свободные радикалы также поступают во внутреннюю среду из-вне и это обстоятельство усугубляется нарастанием уровня антропогенных загрязнений во внешней среде. Ориентировочный расчет показывает, что если в 1 мг клеточных липидов содержится в среднем 109 молей свободных радикалов (минимальный уровень радикального фона), то при общем содержании липидов в живых тканях порядка 103 мг/кг свободнорадикальный фон тканевой среды составит 106 моль/л. Такую концентрацию свободных радикалов нельзя считать пренебрежимо малой. Низкие концентрации свободных радикалов действуют на организм непрерывно и в соответствии с известным правилом “эффект = доза Х время” вызывает ультрамикроскопические структурные повреждения, которые отчасти необратимы по законам энтропии. Таким образом во внутренней среде организма существует субклинический токсический свободнорадикальный или перекисный фон, который дополняется естественными метаболическими токсинами и шлаками. Считается, что концентрации указанных токсических агентов не приводят к видимым физиологическим нарушениям, если они не выходят за пределы так называемой “нормы”. Однако хорошо известно, что эпизодичекие сеансы детоксикации у практически здоровых людей (потогонные процедуры, очистительные клизмы, энтеросорбенты) приводят к улучшению физической формы. Это доказывает реальность субклинического самоотравления организма при формально хорошем общем состоянии. Энтеросорбенты, предназначенные для связывния кишечных токсинов, всегда указываются в списках геропротективных факторов наряду с антиоксидантами, витаминами, некоторыми микроэлементами, а также факторами связывания тяжелых металлов. (164) Катодная активация питьевой воды создает в организме электронодонорный противоокислительный фон, усиливает действие эндогенных и экзогенных антиоксидантов. Электрохимическая очистка воды снижает ее токсичность по содержанию тяжелых металлов в сотни раз. Таким образом потребление катодно активированной (католита) при соблюдении необходимых мер фармакологической и токсикологической предосторожности решает значительную часть задач по защите организма от аутоинтоксикации и экзогенной интоксикации с участием агентов электроноакцепторного действия. Электроактивированная вода обладает высокой способностью проникать через биологические барьеры и за счет этого усиливает вымывание из организма токсических продуктов. Длительно существующие электронно неравновесные состояния жидких сред встречаются в природе достаточно часто. Это относится ко многим напиткам, характеризующимся регрессией ОВП порядка 100-400 мВ (виноградный и томатный сок, хлебный квас, легкие виноградные вина, пиво, тонизирующие и витаминизированные напитки) (см. табл. 3.1). Обычная (неактивированная) питьевая вода в том числе бутилированная родниковая вода с ОВП = 250-350 мВ,ХСЭ находится в электроно равновесном состоянии (регрессия ОВП отсутствует). Минерализованные воды типа “Нарзан”, “Ессентуки” (в бутылках) имеет небольшую регрессию ОВП 20 - 60 мВ. Однако образец свежей марциальной воды после суток хранения имел регрессию ОВП, равную 169 мВ. Предполагается, что родниковые воды непосредственно у выхода на поверхность также активированы и характеризуются сдвигом ОВП в сторону электронодонорных значений (см. раздел 4.11). Все указанные здесь напитки, характеризующиеся регрессией ОВП, а также свежая родниковая вода, обладают очевидным оздоровляющим действием. Это относится и к легким спиртным напиткам, употребляемых в дозах, исключающих существенное опьянения или патологическое привыкание. Известно, что в США благодаря культуре широкого применения фруктовых соков и тоников с относительной электронодонорной активностью резко уменьшилась частота злокачественных опухолей желудка. Но общая онкологическая смертность остается в США на высоком уровне, то есть по мере вытеснения рака желудка за счет местной противоокислительной защиты слизистой желудка напитками с антиоксидантными свойствами в организме под влиянием общих причин возникают другие очаги малигнизации. Можно надеяться, что дополнение арсенала антиоксидантных напитков катодно активированной водой, употребляемой для питья, для варки пищи и в технологиях приготовления фруктовых, овощных соков, тоников и лекарственных смесей, будет способствовать генерализации противоокислительного фона в организме, повышению стабильности его перекисного гомеостаза и увеличению сопротивляемости токсическому действию электроноакцепторных факторов (в том числе канцерогенов, мутагенов, радиомиметиков, иммунодепрессантов, ксенобиотиков и антиметаболитов). Электронодонорные свойства воды, пищевых продуктов и лекарственных препаратов не являются “абсолютно полезными” в том смысле, что стратегия выживания и укрепления здоровья требует употребления только одних антиоксидантов и исключения окислителей. ЭХА-среды с электроноакцепторными свойствами и квантовые воздействия на организма могут быть использованы для окислительной детоксикации. Уникальность детоксицирующего действия анодно активированной воды в том, что она способствует окислительному гидроксилированию гидофобных токсинов, которые после перехода в гидрофильную форму легко удаляются почками, потовыми железами, печенью и другими органами экскреции. Соответственно, курсы электронодонорной и электроноакцепторной терапии должны чередоваться в зависимости от медицинских показаний. Действие факторов ЭХА на жидкие биологические среды создает в них определенные микроэкологические условия, влияющие на процессы размножения, роста, дифференцировки, миграции и функционирования клеток. ЭХА-вода - отнюдь не панацея. Тем не менее феномен ЭХА лежит в основе суммы технологий направленного регулирования гомеостаза внутренней среды организма на электронно-энергетическом уровне, что создает предпосылки изменения биохимического и биофизического статуса человека возможно впервые за все время его существования со времен древности. Использование ЭХА-воды в качестве биологически активной системы представляется перспективным в качестве стимулятора восстановительных процессов в организме, регулятора метаболизма, средства детоксикации и предупреждения ряда заболеваний. ЭХА-растворы применяются во многих лечебных, санитарно-гигиенических, биологических и промышленных технологиях. Сфера изучения и практического приложения ЭХА непрерывно расширяется. В настоящее время можно с достаточной степенью уверенности утверждать, что изучение проблем “живой” и “мертвой” воды вышло за рамки догадок и недоказанных гипотез. Исследования феномена ЭХА, проведенные в СССР и в России, полностью подтверждены в Японии. Японский институт воды опубликовал дилерскую книгу, посвященную описанию свойств так называемой “микроводы” или ЭХА-воды по нашей терминологии.(165) Указанный источник содержит техническое описание диафрагменного электролизера проточного типа и элементы концепции ЭХА водных сред. Основные положения этой концепции следующие. Вода и водные растворы являются структурно организованными средами. Около 2% кислорода в организме присутствует в форме гипероксидного радикала (при физических нагрузках содержание таких радикалов в тканях возрастает на порядок). Активированный кислород вырабатывается фагоцитами (нейтрофилами) и участвует в перекисной инактивации кишечных токсинов (сероводорода, аммония, гистамина, индола, фенолов, скатолов). Японские исследователи считают, что окислительная детоксикация неизбежно сопровождается “эксцессом продукции активного кислорода”. Токсическое действие кислородных радикалов проявляется в форме хронических гепатитов, циррозов печени, панкреатитов, атрофии островкового аппарата поджелудочной железы (диабет), в форме нефритов, раковых поражений печени, поджелудочной железы и почек. Недостаточность механизмов окислительной детоксикации приводит к тому, что те же самые виды патологии возникают в результате самоотравления кишечными токсинами. Сероводород и аммоний повреждают печень. Гистамин участвует в патогенезе алергий, ряда кожных заболеваний и бронхиальной астмы. Индолы и скатолы провоцируют канцерогенез. В итоге организм оказывается в неустойчивом состоянии относительно двух патогенетических схем, альтернативных по признаку токсического действия на жизненно важные органы. Ингибиторы канцерогенеза, обладающие противоокислительной активностью (витамин С, витамин Е, -каротин, глютатион), отдают электроны свободным радикалам и предупреждают их действие на ткани. Но “эти субстанции не лучший источник свободных электронов для блокирования перекисного окисления”. Вода, подвергнутая катодному электролизу приобретает повышенный восстановительный потенциал и “становится источником свободных электронов”. Термин “микровода” отражает то обстоятельство, что при электрохимической обработке исходная кластерная структура воды (Н2О)10-13 редуцируется до (Н2О)5-6, что подтверждается данными ЯМР-исследования. То есть в водной среде происходит структурная сублимация и такая электронодонорная вода легче проникает в ткани. Молекулярная масса воды существенно меньше, чем у любых других антиоксидантов. Поэтому общее количество молекулярных единиц электронодонорного действия в объеме “микроводы” намного больше по сравнению с эквивалентным объемом растворов обычных антиоксидантов в неактивированной воде. Токсическое действие электроноакцепторного кислородного радикала (АО) на электронодонорную биомолекулу (ВМе) формализуется следующим образом: АО + ВМе АОе + ВМ “Радикализированная” биологическая молекула считается поврежденной. При этом возникает существенный риск нарушения генетического кода соматических клеток. Механизм антирадикального действия электронодонорной “микроводы” (MWе) представлен следующим образом: ВМе МWе + АО ВМе MW + АОе Следовательно катодная “микровода” осуществляет антирадикальную защиту биологических структур. Исходная японская вода имеет рН = 7 при ОВП = 400 - 500 мВ,ХСЭ, катодная “микровода” (католит) и анодная “окисляющая” вода, полученные на японской установке, имеют следующие характеристики: католит: рН = 8 ; ОВП = (-250) - (-350) мВ,ХСЭ; анолит: рН = 4 ; ОВП = 700 - 800 мВ,ХСЭ . Эти характеристики считаются оптимальными для терпевтических целей. Католит применяется внутрь, анолит используется как антисептик. По существу данные японских исследований означают начало периода международного признания теории ЭХА в качестве перспективной в плане практических разработок. ^ 1. И.В.Давыдовский Проблемы причинности в медицине (этиология). Госиздат медицинской литературы. Москва. 1962. С. 48-53. 2. Ю.М.Сокольский Омагниченная вода: правда или вымысел. “Химия”. Ленинград. 1990. С. 27-40. 3. И.Д.Зайцев, Применение и познание временно активирован- Э.И.Креч ной воды. (ж) Химическая промышленность. 1989. №4. С.44-47. 4. Г.А.Крестов Основные понятия современной химии. Б.Д.Березин “Химия”. Ленинград. 1983. С.24. 5. В.М.Бахир Электрохимактивация - новая техника, новые технологии. Об электрохимической активации и воде “живой” и “мертвой”. Вып.1. ВНИИИМТ. Москва. 1990. 6. В.М.Бахир Электрохимактиввация - новая техника, новые технологии. История и сущность. Вып.2. ВНИИИМТ. Москва. 1990. 7. В.М.Бахир Регулирование физико-химических свойств технологических водных растворов уни- полярным электрохимическим воздействием и опыт его практического применения. Дисс. к.т.н. Казань. 1985. 8. В.М.Латышев Неожиданная вода. Изобретатель и рацио- нализатор. №2. 1981. С. 20-22. 9. В.М.Бахир Электрохимактивация - новая техника, Ю.Г.Задорожний новые технологии. Электрохимические реакторы РПЭ. Вып. 4. ВНИИИМТ. Москва. 1991. 10. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.1. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 220-226. 11. Н.А.Лопаткин Эфферентные методы в медицине. Ю.М.Лопухин Медгиз. Москва. 1989. С. 320-338. 12. Информационный проспект фирмы Ionica Co, Ltd, 2577-8. IKKY, Kochi City Kochi, 780. Japan. 13. T.M.Lotts Redox Shock. Water quality association. 20 Annual convention and exhibition. March. 1994. Phoenix. Arisona. P.20. 14. А.Сент-Дьердьи Биоэлектроника. “Мир”. Москва. 1971. С. 11-13. 15. Г.В.Сумаруков Окислительное равновесие и радиочувстви- тельность организмов. Атомиздат. Москва. 1970. С.4. 16. Л.Стайер Биохимия. “Мир”. Москва. Т.2. 1985. С.72- -74. 17. Ф.Б.Штрауб Биохимия. АН Венгрии. Будапешт. 1985. С.181. 18. БМЭ, изд.2, 1958, т.7. С.558. 19. Г.В.Сумаруков Цитированный источник. С. 6-7. 20. Г.В.Сумарков Там же. С. 34-36. 21. Г.В.Сумаруков Там же. С. 21-65. 22. Г.В.Сумаруков Там же. С.66-92. 23. Международный энциклопедический словарь (МЭС 891) “Электробиология”. 24. Л.С.Лилич Окислительно-восстановительные М.К.Хрипун донорно-акцепторные реакции в и другие растворах. ЛГУ. Ленинград. 1978. С.3. 25. Химия и жизнь. 1988. №5. С.41. 26. В кн. Новые методы дезинфекции и стерилизации в медицине. Дагомыс. 1991. С.2. 27. Химия и жизнь. 1988. №5. С.37. 28. Химия и жизнь. 1985. №7. С.67. 29. Ю.А.Фурманов Химия и жизнь. 1985. №7. С.66. 30. Т.В.Плешакова В кн. Всероссийская конференция В.И.Прилуцкий “Электрохимическая активвация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Тез. докл. Ч.2 ВНИИИМТ. Москва. 1994. С.5-7. 31. Т.Эрдеи-Груз Явления переноса в водных растворах. “Мир”. Москва. 1976. С. 222-243, 516- -577. 32. Г.В.Сумаруков Цитированный источник. С. 45-53. 33. И.Л.Герловин Основы единой теории всех взаимодействий в веществе. Энергоатомиздат.Ленинград.1990 34. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.1. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 197-204. 35. R.Giller (Ed.) В кн. Сirculation, respiration, and metabolism. Springr-Verlag. 1985. p. 443-444. 36. Е.А.Лужников Клиническая токсикология. “Медицина”. Москва. 1982. с. 168, 205. 37. Г.В.Сумаруков Цитированный источник. С. 31-35. 38. А.с. СССР 1121905. 39. А.с. СССР 1121906. 40. P.S.Malchesky, Aggregation of macromoleculs T.Horiuchi, in therapeutics temperature effect M.Emura, and membrane plasma filtration. Y.Nose В кн. Flocculation in biotechnology and separation system. Ed. Yaattia. Amsterdamm. 1987. P. 481- 498. 41. А.П.Еськов Количественный экспресс-метод оценки Р.И.Каюмов токсичности полимеров с использованием клеточного тест-объекта. Методические рекомендации. Минздрав СССР. 1987. 42. В.И.Прилуцкий В кн. Всероссийская конференция Р.И.Каюмов “Электрохимическая активация в А.П.Еськов медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. Тез. докл. НПО “Экран”, ВНИИИМТ, 1994. С.47-52. 43. В.В.Лукашов В кн. Новые методы дезинфекции и стерилизации в медицине. Дагомыс. 1991. С. 9-10. 44. И.И.Гительзон Эритрограммы как метод клинического И.А.Терсков исследования крови. СО АН СССР. Красноярск. 1959. 45. J.S.Grey The multiple factor theory of respiration regulation, AAF Scool of Aviation Med. Randolf Field, Texas, Prodject 386, Rep.1, May 7, 1945. 46. Отчет 72-59 ВНИИИМТ. 1972. 47. Ю.П.Козлов Свободнорадикальное окисление липидов на биомембранах в норме и при патологии. В кн. Биоантиокислители “Наука”. Москва. 1975. С. 5-14. 48. А.И.Журавлев Биоантиокислители в живом организме. В кн. Биоантиокислители. “Наука”. Москва. 1975. С. 15-29. 49. О.Н.Воскресенский Значение системного биологического ингибирования перекисей липидов в атерогенезе. В кн. Биоантиокислители. “Наука”. Москва. 1975. С.121-125. 50. A.L.Tapel Geriatrics. 1968. V.23. Р.97. Цит. по кн. Биоантиокислители. “Наука”. Москва. 1975. С. 123. 51. Ф.Б.Штрауб Цит. источник. С. 158, 166. 52. В кн. Circulation, respiration, and metabolism. Ed. by R.Gillers. Springer-Verlag. 1984. P.424. 53. М.Д.Бриллиант Роль липидов в распределении А.И.Воробьев эритроцитов на кислотной эритрограмме. В кн. Вопросы биофизики, биохимии и патологии эритроцитов. СО АН СССР. “Наука”. Москва. 1967. С. 123-131. 54. В кн. Изменения системы крови при воздействии радиации и бензола. Ред. И.И.Гительзон. “Наука”. Новосибирск. 1990. С.19. 55. Отчет по НИР “Применение озона в медицине, сельском хозяйстве и технике”. Всероссийский электро- технический институт. Истра. 1992. 56. Б.Н.Тютюнников Химия жиров. “Пищевая промышлен- ность”. Москва. 1966. С. 168. 57. В.А.Исаева Свободнорадикальные процессы Е.А.Базанов и старение соединительной ткани. В.Б.Спиричев В кн. Биоантиокислители. “Наука”. Москва. 1975. С. 135-138. 58. Е.П.Сидорик Связь активности биоантиоксидантов Е.А.Балглей с процессами пролиферации при Т.Н.Юрковская гепатоканцерогенезе и регенерации И.Б.Каганович печени. Там же. С. 179-181. 59. А.В.Алексеенко Изменения антиокислительных свойств Е.Б.Бурлакова липидов на разных стадиях клеточного А.А.Вайсон цикла. Там же. С. 53-57. 60. Старение и долголетие. Фонд радикаль- ного продления жизни. Вып.1. 1992. 33 с. 61. H.Selye Syndrome produced by diverse noxious agents. Nature. ¹3479. Р.32. 62. H.Selye Physiology and pathology of exposure to stress. Montreal. 1950. 63. Б.Н.Тарусов Свободнорадикальные процессы в Ю.П.Козлов биологических системах. Труды МОИП. О.Р.Кольс Т.16. “Наука”. Москва. 1966. С.218. И.М.Лимаренко 64. С.А.Паничева Новый способ повышения сохранности В.И.Прилуцкий мясного сырья. В кн. Всероссийская конференция “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине” Москва. 1992. С.168-170. 65. И.И.Иванов Витамин Е, биологическая роль в связи М.Н.Мерзляк с антиоксидантными свойствами. Б.Н.Тарусов В кн. Биоантиокислители. “Наука”. Москва. 1975. С.45. 66. В.В.Бражников А.с. СССР №882307. 1981 Е.М.Бражников С.С.Ващун с соавт. 67. А.с. СССР. №104758. Бюлл. изобретений. №35. 23.09.1983. 68. А.К.Мартынов Метод электрохимического окисления Т.А.Ушакова крови - способ элиминации продуктов Р.Г.Ахмеджанов ПОЛ в крови обожженых собак. В кн. Новые методы дезинфекции и стерилизации в медицине. Дагомыс. 1991. С.28. 69. Б.И.Чистов О возможности природной редокс- В.И.Прилуцкий активации природных вод. В кн. Всероссийская конференция “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. ВНИИИМТ НПО “Экран”. Москва. 1994. С.84-87. 70. T.M.Lotts Where oxidation reduction media work. Water technology. V.17. ¹2. Feb.1994. P.77-79. National trade publication USA. 71. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.200-221. 72. В.И.Белова Влияние электрохимически активирован- М.В.Соболева ных растворов на ультраструктуру И.М.Цвирова клеток синегнойной палочки. В.Н.Герасимова В кн. Всероссийская конференция А.С.Белова “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 66-67. 73. А.А.Ющенко Влияние электрохимически активирован- М.Ю.Юшин ных растворов на жизнеспособность О.А.Итурганова бактерий. В кн. 2 Всероссийская конференция “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1993. С. 24-26. 74. Л.Г.Пантелеева Дезинфицирующие свойства “нейтраль- с соавт. ных анолитов”, вырабатываемых в установках СТЭЛ-МТ-1 и СТЭЛ-4Н. В кн. Всероссийская конференция “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.74-75. 75. Н.В.Рамкова Применение для стерилизации растворов, Л.В.Евтикова получаемых электрохимическим путем. Там же. С. 76-77. 76. С.В.Поликарпова Опыт применения нейтрального анолита, О.И.Сухова с соавт. получаемого на установке СТЭЛ-МТ-1М с целью дезинфекции, предстерили- зационной очистки и стерилизации в отделениях реанимационного профиля и ЛОР-кабинете. Там же. С.78-80. 77. Н.П.Кирбасова Опыты работы по практическому приме- Л.Н.Гуджинская нию электрохимически активированных С.А.Паничева солевых и антисептических средств в научном центре акушерства, гинекологии и перинатологии РАМН. В кн. 2 Всероссийская конференция “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1993. С.29-32. 78. С.В.Мальгинов Применение раствора гипохлорита В.М.Мельникова в травматологии и ортопедии. с соавт. Там же. С.15-17. 79. А.А.Шпат Опыт использования аппаратов СТЭЛ в Латвии. Там же. С. 13-14. 80. В кн. Вредные химические вещества. Ред. В.А.Филов. Неорганические соединений У-У111 групп. Л. “Химия”. 1989. С. 375, 380. 81. С.А.Алехин В кн. Всероссийская конференция с соавт. “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.99-108. 82. В.М.Бахир Способ получения жидкости с биоло- А.Х.Касымов гически активными свойствами. с соавт. А.с. СССР №№ 1121905, 1121906, 1121907. 83. С.Н.Александров Влияние радиопротекторов на эффект сокращения жизни облученных био- логических объектов. В кн. Проблемы природной и модифицированной радиочувствительности. “Наука”. Москва. 1983. С. 6-14. 84. С.П.Ярмоненко Управление тканевой радиочувстви- тельностью и лучевой терапией опухолей. Там же. С. 240-250. 85. Н.М.Эммануэль Физико-химические принципы повыше- ния радиочувствительности опухолей и радиационной защиты нормальных тканей. Там же. С. 227-240. 86. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.1. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.204-205. 87. Методические рекомендации по приме- нению активированной воды в произ- водстве мяса бройлеров. ВНПО. “Союзптицепром”. Загорск . (ныне Сергиев-Посад). 1990. 88. В.И.Филоненко Поение мясных кур родительского В.Г.Шоль стада электроактиврованной водой. О.В.Богатова В кн. Всероссийская конференция. “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. ВНИИИМТ. АО НПО “Экран”. Москва. 1994. С. 69-70. 89. В.И.Филоненко Режимы поения мясных кур родитель- В.Г.Шоль ского стада. Там же. С. 71-72. О.В.Богатова 90. В.Г.Шоль Поение ремонтного молодняка мясных О.В.Богатова кур электроактивированной водой. С.И.Спирина Там же. С. 72-74. 91. О.В.Богатова Влияние ЭАВ на гематологические показатели крови цыплят. Там же. С. 74-75. 92. О.В.Богатова Использование питательных веществ корма при поении бройлеров электро- активированной водой. Там же. С.75- -76. 93. О.В.Богатова Изучение влияния электроактивирован- ной воды на усвоение витаминов при поении бройлеров. Там же. С.76-77. 94. В.И.Филоненко Режимы поения бройлеров. О.В.Богатова Там же. С. 77-78. С.И.Спирина В.М.Бахир 95. А.А.Шпат Применение продуктов электролиза раствора повареной соли в сельском хозяйстве. Аналитический обозор. Рига. 1990. 96. А.П.Воротынцев Способ получения моющего раствора А.М.Пулавский для удаления белковых загрязнений. И.Л.Лир А.с. СССР № 1623198. В.М.Бахир с соавт. 97. С.Я.Ланина В кн. Всероссийская конференция “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.112-113. 98. С.Я.Ланина Там же. С. 114-115. С.А.Паничева Н.М.Страхова 99. С.А.Паничева Там же. С. 130-131. с соавт. 100. С.Я.Ланина В кн. Всероссийская конференция С.А.Паничева “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1994. С. 36-37. 101. С.Я.Ланина Там же. С. 37-39. С.А.Паничева 102. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.1. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 208-209. 103. В.М.Бахиир Там же. С. 207. 104. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.168-179. 105. В.М.Бахир Там же. С. 179-180. 106. В.М.Бахир Там же. С. 189-195. 107. В.М.Бахир Там же. С. 196-199. 108. Отчет ВНИИ хлебопекарной проиыш- ленности Минхлебопродуктов СССР. 1987. 109. Г.Г.Романюк В кн. 1У Всесоюзная конференция В.Л.Касперович “Электрофизические методы обработки пищевых продуктов и сельскохозяйст- венного сырья”. Москва. 1989. С.75-76. 110. А.И.Бывальцев Там же. С. 203. с соавт. 111. А.И.Бывальцев Там же. С. 204. с соавт. 112. Г.В.Маслова Там же. С. 204-205. с соавт. 113. А.А.Кочеткова В кн. Всероссийская конференция с соавт. “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 112-113. 114. С.А.Алехин Там же. С. 152-153. с соавт. 115. Д.Халмирзаев Там же. С. 162-163. с соавт. 116. С.А.Паничева Там же. С. 198-199. А.А.Кочеткова 117. С.И.Спирина В кн. Всероссийская конференция с соавт. “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.1. ВНИИИМТ. Москва. 1994. С. 76-77. 118. Л.Г.Ипатова Там же. С. 96-97. с соавт. 119. А.А.Кочеткова В кн. Всероссийская конференция С.А.Паничева “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1994. С. 33-36. 120. А.Ю.Попов Там же. С. 11-14. 121. З.Ж.Челидзе Там же. С. 118-120. с соавт. 122. В.А.Ломачинский Там же. С. 130. 123. А.А.Шпат В кн. 2 Всероссийска конференция “Метода и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1993. С. 14-15. 124. А.А.Шпат В кн. Всероссийская конференция “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности.” Ч.2.ВНИИИМТ. Москва. 1994. С. 46. 125. В.М.Бахир Электрохимическая активация. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.121- -134. 126. В.М.Бахир Там же. С. 134-140. 127. В.М.Бахир Там же. С. 140-151. 128. В.М.Бахир Там же. С. 151-160. 129. В.М.Бахир Там же. С. 160-168. 130. В.М.Бахир Там же. С. 180-181. 131. В.М.Бахир Там же. С. 182-188. 132. С.А.Алехин В кн. Всероссийская конференция с соавт. “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва.1992. С.154- -155. 133. С.А.Алехин Там же. С. 158-159. Т.В.Мгребришвили 134. С.А.Алехин Там же. С. 160-161. с соавт. 135. С.А.Алехин Там же. С. 176-177. с соавт. 136. Т.Л.Черкасова В кн. Всероссийская конференция О.В.Черкасова “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1994. С. 10- -11. 137. С.А.Паничева В кн. Всероссийская конференция с соавт. “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С.205- -209. 138. Д.Виньярд В кн. Всероссийская конференция С.А.Паничева “Электрохимическая активация в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.1. ВНИИИМТ. Москва. С. 105-107. 139. Enigma Solution. Rwanda Project Progress Report. Ad. 1. 15 November 1994. 140. БМЭ, изд.2, т.7, с. 372. 141. Н.Р.Деряба Человек в Антарктиде. Л. А.Л.Матусов “Медицина”. 1975. С.102-103. И.Ф.Рябинин 142.Н.Р.Деряба Адаптация человека в полярных И.Ф.Рябинин в полярных районах земли. Л. “Медицина”. 1977. С. 237. 143. Ю.М.Лопухин О науке, творчестве и здоровье. Москва. “Знание”. 1991. С. 148- -149. 144. J.Williams Can POU offer protection from pathogens ? Water technology. V.17. ¹12. 1994. Р. 60-63. 145. J.T.Lundquist Electrochemical system graduated porous bed section. US Patent. 3.919.062. Nov. 11. 1975. 146. Заявка 59-30476. Яп. 1984. 147. T.D.Luckey Цит. по кн. Ю.А.Ершов, B.Venugopal Т.В.Плетнева. Механизмы токсического действия неорга- нических соединений. Москва. “Медицина”. 1989. С.32. 148. Там же. С.33. 149. Е.А.Лужников Клиническая токсикология. Москва. “Медицина”. 1982. С. 338-341. 150. В.В.Стрелко Электрохимические свойства Н.Т.Картель синтетических активированных углей. В кн. Новые методы дезинфекции и стерилизации в медицине. Дагомыс. 1991. 99-100. 151. Л.В.Аристовская В кн. 2 Всероссийская конферен- В.Н.Федосеева ференция “Методы и средства Н.В.Стомахина стерилизации и дезинфекции в с соавт. медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1993. С. 49-50. 152. Kadaku to kyoiku - Chem. Education. 1993. V.4. ¹2. Р. 101-103. 153. С.А.Алехин В кн. Всероссийская конференция с соавт. “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 83 - 108. 154. Н.А.Лопаткин Цит. источник. С. 334. Ю.М.Лопухин 155. В.Н.Шилов В кн. Новые методы дезинфекции В.И.Сергиенко в медицине. Дагомыс. 1991. С.24- -25. 156. Н.В.Локтионов В кн. 2 Всероссийская конферен- с соавт. ция “Методы и средства стерили- зации и дезинфекции в медицине” ВНИИИМТ. Москва. 1993. С.9- -12. 157. В.И.Сергиенко Сообщение на клинической кон- ференции Центрального институ- та травматологии и ортопедии. Москва. 13.05.1993. 158. А.А.Ющенко В кн. Всероссийская конференция “Методы и средства стерилизации и дезинфекции в медицине”. ВНИИИМТ. Москва. 1992. С. 142-143. 159. А.А.Ющенко В кн. Всероссийская конференция Е.И.Шац “Электрохимическая активация М.Ю.Юшин в медицине, сельском хозяйстве, промышленности”. Ч.2. ВНИИИМТ. Москва. 1994. С. 3-5. 160. Л.И.Герасимова В кн. Новые методы дезинфекции С.В.Смирнов в медицине. Дагомыс. 1991. С. 61-62. 161. А.И.Арчаков Окисление чужеродных соедине- И.И.Карузин ний и проблемы токсикологии. Вестник АМН СССР. 1988. №1. С. 14-28. 162. Ф.З.Меерсон Адаптация, стресс, профилак- тика. “Медицина”. Москва. 1981. 163. Н.С.Нилова Система перекисного окисления Л.Н.Полежаева липидов головного мозга крыс в условиях эмоционально болево- го стресса различной длительно- сти. Вопросы мед. химии. Т.39. №6. 1993. С. 28-31. 164. Старение и долголетие. Вып.1. Фонд радикального продления жизни. 1992. С. 1-2. 165. Hidemitsu Hayashi Welcome to Microwater! Nisshin Building, 2-5-10 Shinjiku, Shinjiku-ku, Tokyo, Japan 160. С О Д Е Р Ж А Н И Е . Введение Глава 1. Первые исследования феномена ЭХА 1.1. Как была открыта “живая” и “мертвая” вода 1.2. Развитие и разработка новых технических средств ЭХА 1.3. Факторы физико-химической активности ЭХА-сред 1.4. Медико-биологические предпосылки электро-химического регулирования 1.5. Непрямая электрохимическая обработка сыворотки крови крупного рогатого скота в диализаторе аппарата “искусственная почка”. (Стендовые эксперименты) 1.6. Вероятный диапазон сдвигов ОВП внутренних сред организме при питье католита 1.7. Окислительно-восстановительный ареал среды обитания микроорганизмов ^ 2.1. Толкование понятия “окислительно-восстановительный потенциал” 2.2. ОВП как показатель электронного равновесия жидких биологических сред организма 2.3. Окислительно-восстановительный потенциал внутренних сред организма: физиологический и патофизиологический смысл, проблемы измерения и регулирования 2.4. Окислительно-восстановительный потенциал как мера электронного давления ^ 3.1. Дискуссия по поводу феномена “электрохимическая активация” 3.2. Распределение сопряженных значений рН и ОВП водных сред, подвергнутых электрохимической обработке, по сравнению с аналогичным распределением этих показателей в водных средах, не подвергавшихся электрохимическому воздействию 3.3. Динамика показателей рН и ОВП католита на основе воды с различным уровенм минерализации в процессе его хранения 3.4. Определение терминов “вода” и “раствор” применительно к технологии ЭХА 3.5. Способность ЭХА-растворов “запоминать” состояние электроактивации при навязанных изменениях или при фиксации рН в буферных смесях 3.6. Косвенное биохимическое следствие приема католита внутрь. (Показатели рН и ОВП в моче после питья разовой порции католита питьевой воды) 3.7. Теоретическое сравнение предполагаемого электронодонорного воздействия католита на внутреннюю среду организма с действием антиоксидантных препататов и радиопротекторов 3.8. Явление сверхсуммации электронодонорных свойств ЭХА-воды и веществ с антиоксидантной активностью 3.9. Возможность получения ЭХА-сред на основе дистиллированной воды 3.10. Способность солевых растворов, приготовленных на ЭХА-воде, сохранять электроно-неравновесные свойства исходного растворителя 3.11. Бесконтактная ЭХА - прямое доказательство активации воды, не зависящей от появления в ней продуктов электрохимического синтеза 3.12. Особенности рН-метрии в ЭХА-растворах 3.13. Общие принципы технологии синтеза ЭХА-растворов в электрохимических установках на основе модуля ПЭМ ^ 4.1. Возможные пределы изменения ОВП в органах и тканях 4.2. Совместимость ЭХА-растворов с жизнью клеточных тест-объектов 4.3. Комплексное описание физиологических гомеостазированных систем как объектов электрохимического регулирования с учетом возможных точек приложения действия ЭХА-растворов 4.4. Возможные патофизиологические следствия действия ЭХА-растворов на биохимическом и клеточном уровне 4.5. Саногенетическая модель действия ЭХА-растворов во внутренней среде организма 4.6. Вероятные механизмы действия ЭХА-растворов на клеточном уровне 4.7. Окисление, старение, физиологический стресс 4.8. Модельный эксперимент по изучению влияния ЭХА-растворов на тканевой массив 4.9. Нарушения перекисного гомеостаза жидких биологических сред при некоторых видах патологии и при экспериментальных воздействиях 4.10. Социально-экологический аспект управления электронным статусом внутренней среды организма ^ 5.1. Действие ЭХА-растворов на организм мелких лабораторных животных по данным Ташкентского филиала ВНЦХ АМН СССР. 5.2. Косвенная оценка ОВП крови человека, регулирование ОВП крови при гемодиализе 5.3. Подвижность клеточного тест-объекта в диализном растворе на основе катодно активированной деминирализованной воды 5.4. Действие ЭХА-растворов на морфологию и жизнеспособность бактерий 5.5. Обеззараживающие свойства активированного анолита 5.6. Токсикологическая оценка ЭХА-растворов, синтезированных установками СТЭЛ 5.7. Влияние католита на механизмы иммуногенеза 5.8. Радиопротекторные и радиосенсебилизирующие свойства ЭХА-растворов 5.9. Влияние католита и анолита на активность каталазы листьев пшеницы, выращенной из семян, замоченных ЭХА-растворами 5.10. Действие ЭХА-растворов на кинетику протеолиза in vitro 5.11. Поение катодно активированной водой цыплят бройлеров и мясных кур 5.12. Применение установок СТЭЛ в Латвии ^ 6.1. Отмывка, регенерация, улучшение биосовместимости и функциональных свойств изделий медицинского назначения 6.2. ЭХА в пищевой и биологической промышленности 6.3. ЭХА-растворы в косметологии 6.4. Технологическое использование ЭХА-растворов в сельском хозяйстве и при обработке сельскохозяйственного сырья 6.5. Кондиционирование воды плавательных бассейнов и питьевых источников сомнительного качества ^ 7.1. Общие принципы очистки питьевой воды. Физико-химические предпосылки электрохимической обработки воды низкой минерализации 7.2. Электрохимические установки “Изумруд” на основе модуля ПЭМ для обеззараживания и очистки питьевой воды 7.3. Эксплуатационные характеристики установок “Изумруд”. Показатели качества электрохимически очищенной питьевой воды 7.4. Эффективность установок “Изумруд” по показателям очистки воды от соединений тяжелых металлов с позиций концепции, принятой в Великобритании и США 7.5. Сравнительные оценки эффективности очистки воды установками “Изумруд” и бытовыми устройствами фильтрационно-сорбционного типа 7.6. Биологическое действие воды, очищенной на установках “Изумруд” ^ 8.1. Обоснование дозы ЭХА-растворов, предназначенных для приема внутрь с терапевтическими целями 8.2. Опыт лечебного применения ЭХА-растворов 8.3. Экспериментальное исследование лечебного применения анолита нейтрального, синтезированного на установках СТЭЛ 8.5. Механизм действия ЭХА-растворов при ожоговых поражениях кожи 8.5. Сравнительный анализ различных направлений лечебного применения ЭХА-растворов 8.6. Ванны общие с католитом 8.7. Применение ЭХА в экстремальной медицине Заключение. |
Ваша оценка этого документа будет первой.
Ваша оценка:
Похожие:
База данных защищена авторским правом ©MedZnate 2000-2016
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям