Методическое издание «Рабочая тетрадь 1 по цитологии и эмбриологии животных» для студентов факультета ветеринарной медицины по курсу «Цитология, Гистология и Эмбриология». Улан-Удэ: Изд-во бгсха, 2011. Ц 946
|
|
Скачать 410.54 Kb.
|
|
МИНИСТЕРСТВО СЕЛЬСКОГО ХОЗЯЙСТВА РФ ДЕПАРТАМЕНТ НАУЧНО-ТЕХНОЛОГИЧЕСКОЙ ПОЛИТИКИ И ОБРАЗОВАНИЯ ФГБОУ ВПО «БУРЯТСКАЯ ГОСУДАРСТВЕННАЯ СЕЛЬСКОХОЗЯЙСТВЕННАЯ АКАДЕМИЯ ИМЕНИ В.Р.ФИЛИППОВА» КАФЕДРА АНАТОМИИ, ГИСТОЛОГИИ И ПАТОМОРФОЛОГИИ Цыбикова Р.Н., Цыдыпов Р. Ц., Малакшинова Л. М., РАБОЧАЯ ТЕТРАДЬ 1 «ЦИТОЛОГИЯ И ЭМБРИОЛОГИЯ С ОСНОВАМИ ГИСТОТЕХНИКИ» ФИО___________________________________________ Группа___________________________________ Улан- Удэ 2011 УДК 619:578(07) Ц 946 Печатается по решению методического Совета ФГОУ ВПО « Бурятская государственная сельскохозяйственная академия им. В. Р. Филиппова» Рецензент: Доктор сельскохозяйственных наук, профессор Лумбунов С.Г. ^ Методическое издание «Рабочая тетрадь 1 по цитологии и эмбриологии животных» для студентов факультета ветеринарной медицины по курсу « Цитология, Гистология и Эмбриология». Улан-Удэ: Изд-во БГСХА, 2011. Ц 946 Методическое пособие подготовлено в соответствии с действующей программой курса «Гистология, цитология и эмбриология домашних животных» для студентов факультета ветеринарной медицины со специальностями 11201.65 – «Ветеринария» и 110501.65 «Ветеринарно-санитарная экспертиза». Ориентирует студентов на самостоятельную, аудиторную и внеаудиторную работу. В работе содержатся оригинальные фоторисунки, созданные на основе гистологических препаратов научно-исследовательской работы авторов и фондов кафедры. Обобщающие таблицы нацелены на схематичное запоминание пройденного материала. Имеется интерактивный подход к разбору материала в виде ситуационных задач, которые активизируют познавательную деятельность и логическое мышление студентов, прививают им навыки практической деятельности через постановку предварительного диагноза. Рабочая тетрадь написана по единой схеме с выделением целей занятий, их мотивационной характеристики и перечня объектов изучения и является дополнением к руководству к практическим занятиям по цитологии, гистологии и эмбриологии, ранее изданной кафедрой УДК 619:578(07) © Цыбикова Р.Н. Цыдыпов Р. Ц., Малакшинова Л. М., ©Бурятская государственная сельскохозяйственная академия им. Ф.Р. Филиппова, 2011 ^ ЛПЗ № 1: Устройство и показатели микроскопа Цель занятия:
Микроскоп – это оптический прибор, дающий увеличенное изображение объекта двумя самостоятельными оптическими системами – объективом и окуляром. Микроскоп состоит из оптической, механической частей и осветительной системы. К первой относятся объективы и окуляры. Механические части состоят из ножки (башмак), тубуса, предметного столика, штатива, включающего макро- и микровинты. К осветительной системе относятся зеркало и конденсор с диафрагмой. Обычные биологические микроскопы (МБИ-I, МБР-I, БИОЛАМ и другие) в наборе имеют три объектива и столько же окуляров, в то время как у исследовательских число их намного больше. Увеличение объективов бывает 8, 40 и 90-кратным, а окуляров, соответственно 7, 10 15-кратным. Объективы являются важнейшими частями микроскопа, дающими увеличенное обратное действительное изображение. Объективы состоят из линз – шлифованных стекол. Они в некоторой степени дают искажения изображения, которые называются абберациями. Абберации выражаются в появлении нечеткости и цветности изображения. Различают три возможных вида абберации: хроматические, сферическией и по кривизне поля зрения. Сущность хроматической абберации заключается в частичном разложении лучей белого света на составные части при прохождении через линзу объектива. Получается частично цветное изображение объекта. При сферической абберации лучи света, падающие на различные поверхности линзы объектива, преломляются неодинаково и поэтому получается нечеткое изображение изучаемого объекта. Абберации по кривизне поля зрения возникают из-за искривления поверхности изучаемого объекта и в результате центр и края поля зрения одновременно не имеют резкости. Абберации в значительной степени устраняются объективами из нескольких линз, поэтому объективы (особенно большого увеличения) являются многолинзовыми системами. Объективы современных микроскопов по качеству изображения, т.е. по степени устранения аббераций, подразделяются на несколько типов. Объективы ахроматы имеют простое устройство, частично лишены хроматической абберации по двум цветовым волнам и имеют остаточную окраску изображения. Они характеризуются вполне удовлетворительным качеством изображения и поэтому, используется для проведения повседневных работ. Объективы полуапохроматы или флюориты имеют меньше абберации, чем ахроматы. Самыми сложными и лучшими считаются объективы апохроматы, лишенные по существу хроматической абберации. Объективы полуапохроматы и апохроматы используются при проведении научно-исследовательских работ. Вышеописанные объективы имеют существенный недостаток, который заключается в искажении по кривизне изображения, т.е. примерно от одной трети до половины радиуса поля зрения изображение становится размытым. Для устранения этого используются планахроматические и планапохроматические объективы. Они дают плоское изображение поля зрения. Поэтому изображение получается одинаковым на всем поле зрения. Такие объективы незаменимы для микрофотографирования изучаемых объектов. Кроме того, объективы подразделяются на сухие и иммерсионные. В сухих – между объективом и изучаемым объектом находится воздушная среда. К ним относятся, в основном, объективы малого и среднего увеличения (8× и 40×). В объективах большого увеличения – 60× (имеется в научно-исследовательских микроскопах) и 90× пространство между фронтальной линзой объектива и препаратом заполняется иммерсионной средой – водой, водным раствором глицерина или кедровым маслом. Иммерсионные системы обладают большей преломляющей способностью лучей свет, чем воздушная среда и поэтому в объектив попадает больше лучей света. Для научно-исследовательской работы часто используются объективы специального назначения: фазово-контрастные, эпиобъективы и другие. Второй оптической системой микроскопа являются окуляры, которые увеличивают изображение, проецированные объективом. Наиболее простым и широко используемыми являются окуляры Гюйгенса. Они применяются с ахроматическими объективами. Для работы с планахроматическими и апохроматическими объективами больших увеличений применяются компенсационные окуляры. Они более сложно устроенные и в значительной степени исправляют абберации и, тем самым, улучшают качество изображения. Кроме того, для специальных целей применяются фотоокуляры и гомали. Фотоокуляры служат для проецирования изображения на фоточувствительные материалы или же на экран. Известно, что ахроматические и апохроматические объективы имеют значительную кривизну изображения. Гомали устраняют этот недостаток и поэтому могут быть использованы для фотографирования объекта. В то же время они до одной трети уменьшают поле зрения. На объективах и окулярах имеются гравировки. С одной стороны обоймы объектива фигуры или написано «ЛОМО» (Ленинградское оптико-механическое объединение), здесь же указывается номер объектива. На противоположной стороне обоймы объектива указывается его увеличение, численная апертура, а иногда и максимально допустимая толщина покровного стекла (0,17мм). В объективах большого увеличения (90×) гравировано «МИ» (масляная иммерсия). Кроме того, в объективах планахроматах, полуапохроматах и апохроматах гравированы слова «планахромат», «полуапохромат», и «апохромат». В окулярах обычно имеется гравировка увеличения, а в компенсационных буква «К». На занятиях по самостоятельной работе студенты берут закрепленные за ними на ЛПЗ микроскопы. Каждый студент должен определить общее увеличение микроскопа и разрешающую способность его объективов. Для их определения необходимо знать численную апертуру объектива. Численная апертура – это произведение показателя преломления среды на половину апертурного угла и определяется по формуле: А = n*sin Где n – показатель преломления среды, находящегося между препаратом и фронтальной линзой объектива; u – половина апертурного угла. Он образуется коническим пучком света, попадающим в объектив из точки препаратов. Показатель преломления сред различный: ^
Определить разрешающую способность микроскопа
 Рис. 1 Строение микроскопа 1 - 11- 2 - 12 - 3 - 13 - 4 - 14 - 5 - 15 - 6 - 16 - 7 - 17 - 8 - 18 - 9 - 19 - 10 - Таблица 1 ^
Литература
ЛПЗ № 2: Гистологическая техника Цель занятия:
Приемы и методы приготовления гистологических препаратов называются гистологической техникой. Она состоит из нескольких последовательных приемов:
Для ускоренного приготовления гистологических препаратов из промывочной воды кусочки переносятся на столик специального микротома, замораживаются жидкой углекислой и готовятся срезы.
После проводки через спирты производится заливка материала.
^ материал из последнего спирта переносят в равные части спирта – эфира (6-24час.), затем делается последовательная проводка через растворы (2- , 4-5, 10%) целлоидина. В последнем густом растворе целлоидина оставляют на открытом воздухе на 2-3 дня. Спирт – эфир испаряется и целлоидин загустевает. Затем вырезаются заключенные кусочки материала и приклеиваются к деревянным блокам. Хорошо сохраняются блоки в 70º спирте. ^ кусочки ткани проводятся через спирты возрастающей концентрации, включая абсолютный. В дальнейшем материал помещается в раствор из равных частей спирт- хлороформа (вместо хлороформа можно использовать ксилол и толуол). Из этого раствора кусочек перекладывается в чистый хлороформ (2 порции) с последующим переносом в хлороформ – парафин (насыщенный раствор парафина в хлороформе) при температуре 35-40ºС. В последующем материал помещается в 3 порциях расплавленного парафина при температуре 54-56ºС. Из бумаги изготовляются формочки, куда переносится материал и сверху заливается расплавленным парафином. Для быстрого застывания парафина формочки опускаются в чашки с холодной водой.
Наиболее распространенными являются санные микротомы. Они состоят из станины (корпуса), микрометрического винта, объектодержателя, ножевых салазок с зажимом ножа. Для резки блоков используются микротомные ножи. По форме клина лезвия ножей различаются на прямые (обе стороны лезвия ножа плоские), плосковогнутые (одна сторона лезвия плоская, другая вогнутая) и двояковогнутые. Прямые ножи используются для срезки замороженных материалов и парафиновых блоков. Другие ножи чаще всего применяются для срезки целлоидиновых блоков. При установке ножа нужно соблюдать угол резания, образуемый при пересечении верхней плоскости объекта с нижней стороной лезвия ножа. Считается наиболее лучшим угол резания около 15 градусов. При гистохимических исследованиях иногда производится приготовление срезов из нефиксированной ткани. Для этой цели наиболее приемлемым является криостат. Он представляет холодильную установку с помещенным в ней микротомом. После включения прибора через 1-1,5 часа устанавливается автоматически поддерживаемая температура до 30ºС. При низкой температуре под контролем через иллюминатор готовятся замороженные срезы.
Парафиновые срезы не имеют достаточной прозрачности и затрудняется процесс окрашивания. Поэтому их подвергают депарафинированию с помощью ксилола или других растворителей парафина. Затем срезы выдерживают в спиртах нисходящей концентрации о последующим помещением в воду. Целлоидиновые срезы, полученные из блоков, хранящихся в 70º спирте, помещают сначала в 50º спирт, а затем в воду. Срезы из криостата сразу помещают на предметные стекла. Замороженные срезы, приготовленные на микротоме или замораживающем столике, сразу опускают в воду. Окрашиванию подвергаются наклеенные на предметные стекла и не наклеенные срезы. В первом случае для крашения используются биологические стаканчики, высокие бюксы и кюветы. Не наклеенные срезы помещаются в низкие бюксы, часовые стекла. При этом перенос срезов производится с помощью стеклянных крючков. При переносе срезов из одного раствора в другой нужно избегать загрязнения последующих реактивов. При переносе предметных стекол с наклеенными срезами надо давать возможность стекать жидкости, но не допуская их подсыхания. При окрашивании срезов необходимо чаще менять растворы, не допуская их загрязнения. В гистологии применяется много различных красок. Они по химическому составу делятся на основные, кислые, нейтральные и индиферентные. Основные краски являются красящими основаниями и их солями. Гистологические структуры, окрашивающиеся основными красками называются базофильными. Кислые краски – это красящие кислоты и их соли. Гистологические структуры, окрашивающиеся кислыми красками называются оксофильными или ацидофильными. Нейтральные краски – это солеобразные соединения, у которых анионы и катионы являются красящими радикалами. В нейтральных красках базофильные структуры окрашиваются основными компонентами красителя, а кислые – соответственно кислыми радикалами краски. Индиферентные краски – это не красители, а окрашенные вещества. В гистологии они используются для окрашивания жировой ткани. Индиферентные краски (суданы разных марок) хорошо растворяются в жировой ткани и тем самым окрашивают ее. Также красители делятся на субстактивные и аджективые. Первые окрашивают срезы без какой-либо дополнительной обработки, а вторые для окрашивания нуждаются в дополнительной обработке – протравливании. Протравами служат окислы двух – и трехвалентных металлов (железа, алюминия, хрома и других). При окрашивании протравы с красителями образуют хелатный комплекс (лак), который заметно отличается от взятого красителя. Протрава в отдельных случаях может превратить вещество в краситель. Так, например, гематоксилин в чистом виде почти не обладает красящими свойствами, так как его лаки становятся сильными красителями. В гистологии применяются прогрессивные и регрессивные метод окрашивания. При прогрессивном методе срезы окрашивают до желательной интенсивности, когда все необходимые детали среза четко выявляются. При работе регрессивным методом срезы специально перекрашиваются, а затем избыток красителя извлекается соответствующими реактивами. Самым распространенным классическим гистологическим методом является окрашивание гематоксилин – эозином. Гематоксилин – экстракт камышового дерева. Имеется много рецептов приготовления гематоксилина. В нашей лаборатории часто применяются гематоксилины Каррачи, Гейденгайна и Вейгерта. Гематоксилин Каррачи имеет следующий химический состав:
Для приготовления железного гематоксилина Гейденгайна сначала готовят два раствора.
^ Готовят два раствора:
Перед работой обо раствора смешивают в равных частях. ^ Замороженные срезы, за исключением случаев окраски на липиды, помещают для обезжиривания в 70º и 96º спиртах. Парафиновые срезы для удаления его проводят через 2 порции ксилола по 1-2 минуты, затем через спирты убывающей концентрации и переносят в воду. Схема окрашивания гематоксилин – эозином прогрессивным методом.
Схема окрашивания гематоксилин – эозином регрессивным методом. В этом методе используются легко перекрашивающие растворы гематоксилина Бемера, Делафильда, Эрлиха (рецепты их приготовления имеются в пособиях по гистологической технике). Схема окрашивания
Срезы при дифференцировке начинают краснеть. При передержке в солянокислом спирте может произойти полное исчезновение краски. Затем красят эозином. Метод окрашивания под ван Гизон Этот метод окрашивания дает цветное окрашивание разных гистоструктур. Перед окраской растворы Вайгерта1 и 2 смешивают поровну. Получается густая темно-фиолетовая жидкость. Нужно иметь в виду, что в готовом виде краска быстро портится из-за наличия сильных окислителей. Вторую краску –пикрофуксин готовят из насыщенного водного раствора пикриновой кислоты и 1% водного раствора кислого фуксина. Берут 100,0 мл пикриновой кислоты и смешивают с 10 мл фуксина. Образуется стойкая смесь гранатового цвета, сохраняющаяся месяцами. Схема окрашивания по ван Гизон.
После окраски гематоксилин – эозином, по ван Гизон и другими методами готовятся гистологические препараты. Существуют разные методы приготовления препаратов. Чаще всего пользуются заключением в бальзам. Для чего срезы проводят через спирты возрастающей консистенции, а затем через просветляющие среды. К ним относятся ксилол, толуол, эфирные масла, креозот, скипидар, карбоксилол. В большинстве случаев пользуются ксилолами или толуолом. В них срезы помещаются на непродолжительное время. Заключают срезы после ксилола или толуола в канадский или пихтовый бальзам.
Раздел ЦИТОЛОГИЯ ЛПЗ № 3: Морфология клеток Цель занятия:
Задания:
 Рис. 1 Растительные клетки кожицы лука. Ув.40:  Рис. 3 Аппарат Гольджи Ув. 40:  ^ (по Россу): 1 - 2 – 3 – 4 – 5 – 6 – 7 - коллагеновые фибриллы; 8 - эластиновые фибриллы  Рис. 5 Плазматическая клетка селезенки крысы. Электронограмма 30000 (по Ю.И.Афанасьеву, кафедра гистологии I ММИ): 1 – 2 – 3 –  Рис. 6 Десмосомы:часть клеток шиповатого слоя кожи живота человека. Электронограмма. 40 000 (по И.Н.Михайлову и Л.Н.Михайловой): 1 - 2 - 3 – 4 – 5 – 6 –  Рис. 7 Макрофаг. Электронограмма макрофага из лимфатического узла. 13 000 (по И.Б.Токину): 1 – 2 - 3 – 4 – 5 – 6 - Рис. 8 Плазматическая клетка селезенки крысы. Электронограмма 30000 (по Ю.И.Афанасьеву, кафедра гистологии I ММИ): 1 – 2 – 3 – 4 – Рис.9 Десмосомы:часть клеток шиповатого слоя кожи живота человека. Электронограмма. 40 000 (по И.Н.Михайлову и Л.Н.Михайловой): 1 – 2 – 3 – 4 – 5 -  Рис. 10 Соединения эпителиоцитов по типу "замка" Электронограмма клеток мерцательного эпителия бронха. 21 500 (по Ю.Н.Королеву; кафедра гистологии I ММИ): 1 – 2 – 3 – 4 –  Рис. 11 Различные контакты эпителиоцитов (апикальная часть клеток желчного пузыря) Эпителий слизистой оболочки желчного пузыря собаки. Электронограмма 16 000(по Джонсону с соавторами): 1 – 2 – 3 – 4 – 5 – 6 –  Рис. 12 Микроворсинки (щеточная каемка) Апикальная часть клетки проксимального отдела нефрона. Электронограмма. 124 000 (по В.В.Королеву, кафедра гистологии I ММИ): 1 – 2 - ^ Цель занятия:
Жиры обычно окрашивают жирорастворимыми красителями. К ним относятся суданы. Гликоген – это сильно разветвленный сложный полисахарид синтезируемый из глюкозы. Он накапливается в гепатоцитах печени., волокнах поперечнополосатой мускулатуры, хряще и других. Гликоген под воздействием ферментов расщепляется на моносахариды. Гликоген хорошо растворяется в воде и поэтому фиксируют его в специальных фиксаторах. Лучшим оказался фиксатор, предложенный А.Л. Шабадашем (спирт, азотнокислая медь, азотнокислый кальций, формалин). Для гистохимического выявления гликогена применяется реакция Шиффа с фуксинсернистой кислотой после окисления периодатами натрия или калия. Метод основан на окислительном расщеплении 1,2 – гликоля гликогена на альдегиды. Контролем реакции является предварительная обработка материала в амилазе слюны. Для определения нуклеиновых кислот в качестве фиксатора обычно используется жидкость (смесь) Карнуа. Окрашивание срезов производится методами Браше и Эйнарсона. При использовании метода Браше срезы обрабатываются двумя основными красителями метиловым зеленым и пиронином. При этом метиловый зеленый окрашивает ДНК, локализованные в хроматиде ядра, а пиронин соединяется с РНК, находящейся как в ядре, так и в цитоплазме. Таким образом, одновременно окрашиваются обе нуклеиновые кислоты. При использовании метода Эйнарсона (1951) красителем является галлоцианин, который взаимодействуя с хромовокалиевыми квасцами, образует краплак-катион. При низших значениях среды (рН=0,8-1,75) краситель связывается с нуклеиновыми кислотами. Эта реакция считается высокоспецифичной и поэтому применяется для количественного анализа нуклеиновых кислот. Основным недостатком метода является невозможность визуальной дифференцировки ДНК и РНК. Для выявления белков, содержащих три важнейших аминокислоты – тирозин, триптофан, гистидин применяется метод тетразониевого азосочетания по Даниели (1947). Он основан на двух реакциях, следующих одна за другой. Первая реакция азосочетания происходит между тетразосоединением и аминокислотами. Затем свободная диазогруппа реагирует амино- и оксигруппами. В результате получается окраска серо-голубого цвета разной интенсивности. В гистохимии белков можно применять метод сулема – бромфеноловый синий. Он был предложен Деррамом (1950) для определения белка при хромотографии на бумаге. В настоящее время его модификация используется для гистохимического выявления общего белка. Установлено, что на препаратах количество связанного красителя пропорционально количеству белка в соответствии с законом Ламберта – Бера. Задание:
 Рис. 13 Включения гликогена в печени крысы до и после кормления животного:  Рис. 14 Нуклеиновые кислоты в нейронах спинального ганглия. Ув. 40х:  Рис. 15 Включения липидов в клетках коры надпочечников Ув. 40х:  Рис. 16 Адипоцит бурой жировой ткани Клетка бурой жировой ткани новорожденного крысенка (по Ю.И.Афанасьеву и Е.Д. Колодезниковой, кафедра гистологии I ММИ): 1 – ; 2 – ; 3 – . ^ Цель занятия:
Задания:
 Рис. 17 Растительные клетки кожицы лука. Ув 40х: 1- 2- 3-  Рис. 18 Нейроны спинномозгового узла. Ув. 40:  Рис. 19 Центросомы в делящихся яйцах лошадиной аскариды Ув. 40х:  Рис. 20 Амитоз в эпителии мочевого пузыря в 40х: ^ ЛПЗ № 6: ПОЛОВЫЕ КЛЕТКИ Цель занятия:
Задания:
 Рис. 21 Сперматозоид млекопитающих (по С.Л. Кузнецову):  Рис. 22 Строение сперматозоида: 1- 2- 3- 4- 5- 6- 7- 8- 9- 9- 10- 11- 12-  Рис.23 Семенники хряка Ув. 10х:  Рис. 24 Семенники хряка. Ув. 40х:  Рис. 25 Строение яичника крольчихи. Ув. 40х:  Рис. 26 Строение яйцеклетки: Таблица 2. Отличие процессов спермиогенеза от оогенеза
^ Цель занятия:
Задания: По муляжам, плакатам и демонстрационными препаратам разобрать следующие вопросы:
Таблица 3. Классификация яйцеклеток
Таблица 4. Классификация типов дробления
Таблица 5 Способы образования гаструл
Ответ:
Ответ:
Ответ:
Ответ:
Ответ:
Ответ:
Ответ:  Рис. 27 Поздняя бластула лягушки. Ув. 40х:  Рис. 28 Гаструла лягушки Ув.40х:  Рис. 29 Нейрула лягушки Ув. 10Х: ^ Цель занятия:
Задания:
 Рис. 30 Схема развития яйца птицы  Рис. 31 Яйцо курицы, вскрытое в начале инкубации 1- 2- 3- Рис.32 Инкубированное яйцо курицы 1- 2- 3- 4- 5- 6- 7- 8- 9-   Рис. Формирование зародышевых листков курицы . Ситуационные задачи 1. В результате дробления зародыша возникла целобластула. Определите тип яйцеклетки и характер дробления.
 Рис. 34 Сомиты и нервная трубка курицы Ув.10х:  Рис. 35 Сомиты и нервная трубка курицы Ув.40х: ^ Цель занятия:
Задания:
. Таблица 6. Провизорные органы птиц и млекопитающих
Таблица 7. Типы плацент
Таким образом, у млекопитающих имеются:
ПРИЛОЖЕНИЯ ^ Краткий эмбриологический словарь Аллантоис - внезародышевый орган, принимающий участие в газообмене и экскреции у рептилий и птиц. У зародыша человека имеют значение сосуды аллантоиса. Амнион (амниотическая оболочка) - внезародышевый орган, создающий жидкостную среду для развития плода. Состоит из однослойного эпителия и соединительной ткани, связывающей амнион с хорионом. Бластомер - клетка зародыша, образующаяся в результате дробления оплодотворенной яйцеклетки - зиготы. Бластоциста - ранняя стадия развития зародыша человека, на которой зародыш имеет форму пузырька. Наружную стенку пузырька образуют клетки трофобласта, полость пузырька заполнена жидкостью, а к внутренней стороне трофобласта в виде зародышевого узелка прикрепляется эмбриобласт. Бластула - стадия развития зародыша, которой заканчивается процесс дробления бластомеров, зародыш имеет форму диска или полого шара, в котором различают бластодерму и бластоцель, заполненную жидкостью. ^ (висцеральная спланхномезодерма) - внутренний, обращенный к энтодерме, листок спланхнотома. Внутренняя клеточная масса (эмбриобласт) - темные, расположенные на внутренней стороне стенки бластоцисты бластомеры, дающие начало телу зародыша и всем внезародышевым органам, кроме трофобласта. Гаструляция - сложный процесс размножения, перемещения и дифференцировки клеточного материала зародыша, приводящий к образованию зародышевых листков - эктодермы, энтодермы и мезодермы и началу формирования осевых зачатков органов. Деламинация - способ гаструляции путем расщепления единого пласта бластодермы на два слоя клеток - наружный - эктодерму и внутренний - энтодерму. Дерматом - дорсо-латеральный участок сомита, являющийся зачатком соединительнотканной основы кожи. Дискобластула - бластула, образующаяся в результате неполного неравномерного дробления и дискоидального дробления. Дробление - ряд последовательных митотических делений бластомеров без роста дочерних клеток. ^ - внезародышевый орган, появляющийся в эволюции впервые у рыб; стенка желточного мешка у зародыша человека является местом образования первичных клеток крови, кровеносных сосудов, а также местом первичной локализации гонобластов. ^ - способ гаструляции путем выселения клеток зародыша при образовании зародышевых листков и мезенхимы. Имплантация - внедрение зародыша в слизистую оболочку матки. Инвагинация - способ гаструляции путем вдавления бластодермы в основном в области дна бластулы. Мезодерма - средний зародышевый листок, образующийся путем выселения и дифференцировки клеток эктодермы (у хордовых) и первичной полоски (у млекопитающих и человека), располагающихся в виде слоя клеток между экто- и энтодермой. ^ - многоклеточный зародыш, представленный плотным скоплением бластомеров, находящихся на стадии дробления. ^ - эмбриональный зачаток тканей всей нервной системы. Нефротом - сегментированная часть мезодермы, расположенная между сомитами и спланхнотомом, из которой развивается мочеполовая система. Овогония - исходная клетка для развития яйцеклетки, размножающаяся в эмбриональном яичнике и дающая начало овоциту I-го порядка в яичнике новорожденной девочки. Овуляция - разрыв зрелого фолликула и выброс овоцита в брюшную полость. ^ (париетальная соматомезодерма) - поверхностный, обращенный к эктодерме, листок спланхнотома. Первичная полоска - утолщенный участок центральной зоны эктодермы зародышевого щитка в каудальной области, из которого мигрируют клетки, образующие мезодерму. Плацента - внезародышевый орган млекопитающих и человека, состоящий из плодной части - разрастающихся хориальных ворсинок (хориона ворсинчатого) и материнской части - видоизмененной слизистой оболочки матки, превращающейся в децидуальную оболочку. ^ - участок эктодермы, перемещающийся через дорсальную губу бластопора впереди хордальной пластинки и входящий в состав переднего отдела первичной кишки. ^ - провизорный орган, образуется при смыкании амниотических складок у зародышей рептилий и птиц. Синцитиотрофобласт - поверхностный многоядерный слой трофобласта, покрывающий ворсинки хориона, образуется путем слияния клеток трофобластического эпителия. Склеротом - вентромедиальный участок сомита, дающий начало мезенхиме. ^ - вентролатеральная часть мезодермы, не подвергающаяся сегментации, но расщепляющаяся на париетальный и висцеральный листки, между которыми формируется вторичная полость тела - целом. Трофобласт - внезародышевый орган млекопитающих и человека, развивающийся из светлых бластомеров, обеспечивает имплантацию зародыша и его питание, формирует наружный покров хориальных ворсинок. Хорда - спинная струна, развивающаяся у хордовых животных из энтодермы и функционирующая у взрослого животного; у зародыша человека хорда развивается из эктодермы и редуцируется в процессе развития костного скелета. ^ - поверхность хориона, обращенная к основной отпадающей оболочке матки и несущая разветвленные вторичные и третичные ворсинки, участвующие в формировании плаценты. ^ - большая часть поверхности хориона, обращенная к пристеночной и сумочной отпадающим оболочкам матки, не имеющая ворсин. Целом - вторичная полость тела зародыша, выстланная мезотелием. Цитотрофобласт - клеточный, более глубокий слой эпителия, входящий в состав трофобласта хориальных ворсинок. Эктодерма - наружный зародышевый листок 3-слойного зародыша. Энтодерма - внутренний зародышевый листок 3-слойного зародыша. Эпиболия - нарастание материала анимальной части бластулы на вегетативную с одновременным погружением последней внутрь гаструлы. Яйцеклетка - женская половая клетка, образующаяся в результате овогенеза, содержащая ядро с гаплоидным набором хромосом; у большинства видов животных в цитоплазме содержит желточные включения. |
||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||||
Ваша оценка этого документа будет первой.
Ваша оценка:
Похожие:
База данных защищена авторским правом ©MedZnate 2000-2016
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям