|
|
Скачать 1.4 Mb.
|
|
^
ЗАДАЧА № 1. 1. Признаком гемолиза является розово-красная окраска сыворотки и плазмы. При гемолизе разрушаются клеточные оболочки эритроцитов, что связано с попаданием эритроцитов в гипотонический раствор, или с механическим повреждением оболочки, либо с разрушением клеточных мембран при реакции антиген-антитело. 2. Наиболее частые причины гемолиза: а) попадание в пробирку с кровью влаги; б) сильная механическая тряска при транспортировке проб крови; в) остатки моющих средств и реактивов в пробирке; г) резкая смена температуры окружающего воздуха; д) прокол не высохшего пальца; е) длительное сдавление мягких тканей при взятии крови на анализ. 3. Для большинства лабораторных тестов сыворотка с признаками гемолиза не используется. 4. Гемолиз занижает результаты определения билирубина, завышает активность ферментов: АсТ, АлТ, ЛДГ, КК, КФ, ЩФ, α-амилазы и других, которые содержатся в эритроцитах, завышает концентрацию калия и занижает концентрацию натрия. 5. Необходимо дождаться полною образования сгустка, сгусток отделять тонкой стеклянной палоч- кой, избегая резких движений, во время центрифугирования пробирку закрывать крышкой. ^ 1. Нет, результаты будут не достоверны, так как билирубин является светочувствительным веществом. Под воздействием прямого солнечного света в течение 1-2 часов содержание билирубина снижается на 50%. 2. На результаты исследования влияет правильность подготовки пациента: завышают результаты физические нагрузки, длительное голодание, употребление моркови, прием алкоголя перед исследованием. 3. На результаты влияют остатки дезинфицирующих, моющих средств и антикоагулятов в пробирках, которые могут как завысить, так и занизить результаты. Хранение проб крови на свету и доставка их в лабораторию без заворачивания в темную бумагу занижают результат. Гемолиз так же мешает определению. Билирубин в цельной крови не стабилен и позднее отделение сыворотки от сгустка занижает результат. 4. Непрямой (свободный) билирубин определяется по разнице между общим и связанным (прямым) билирубином. 5. Кофеиновый реактив, так же как и другие акселераторы, переводят свободный билирубин в растворимое диссоциированное состояние, в котором он реагирует с диазосмесью. ^ 1. Нет, результаты будут недостоверны, гак как при комнатной температуре уже через 10 минут после взятия крови концентрация глюкозы начинает снижаться: происходит уменьшение концентрации глюкозы вследствие расходования ее на гликолиз, происходящий в клетках крови, и использования глюкозы бактериальными клетками. Уровень глюкозы снижается и из-за гликозилирования белков крови. 2. Кровь необходимо брать утром, натощак, после 12-14 часового голодания и воздержания от приема алкогольных напитков не менее 24 часов. Пациенту не рекомендуется накануне посещать баню, сауну, голодать, курить, пить кофе, выполнять физические нагрузки. 3. Сыворотка должна быть отделена от сгустка как можно быстрее, но не позднее чем через час после взятия крови. Необходимо исключить гемолиз крови, так как он занижает результат. Высокая температура окружающей среды в лаборатории может завышать результаты. 4. Для определения глюкозы в биологических жидкостях используются 3 группы методов: а) ферментативные, основанные на гексокпшиной и глюкооксидазной реакциях; б) редуктометрические, основанные на способности глюкозы восстанавливать соли металлов и другие соединения; в) методы, основанные на цветных реакциях с продуктами, образующимися при нагревании углеводов с кислотами. 5. Для депротеинирования сыворотки крови обычно используют растворы трихлоруксусной кислоты, а в методике определения глюкооксидазным методом применяют ацетат уранила. ^ 1. Активность трансаминаз будет резко снижена, так как при температуре 600С происходит денатурация белков и ферменты теряют свою активность. 2. Ошибки, которые приводят к недостоверным результатам: а) использование гемолизированной сыворотки; б) несоблюдение температурного режима; в) не точное добавление реактивов; г) не соблюдение экспозиции и времени инкубации. 3. Для диагностики инфаркта миокарда определяют активность КК, КК-МФ, АсТ и АлТ, с подсчетом коэффициента де Ритиса, ЛДГобщ. и ЛДГ1 4. ДФГ применяют в качестве ингибитора трансаминаз, а так же для образования окрашенного соединения с продуктами реакции. 5. Нет, так как при разрушении эритроцитов происходит выброс из них трансаминаз и результат определения активности их в крови завышается. ^ 1. Если на контрольной карте хотя бы один результат выходит за пределы X ±3S, тo результаты исследования соответствует контрольным критериям и в этом случае результат не выдается до исправления недостатка в методике. 2. Превышение X ± 3S указывает на увеличение случайных ошибок. 3. Этапы контроля воспроизводимости: а) приготовление слитой сыворотки; б) двадцатидневное исследование слитой сыворотки на содержание кальция; в) статистическая обработка результатов; г) построение контрольной карты; д) ежедневное исследование контрольной сыворотки; с) оценка результатов по критериям. 4. Методы определения кальция: а) основанные на цветных реакциях (с мурексидом, крезолфталеином, с глиоксальбис-2- оксианилом, с комплексонами, с флурсксоном); б) аппаратные (пламенная фотометрия, использование инициализаторов и др.). 5. Нет, так как гемолиз сыворотки может как занижать, так и завышать результат определения содержания кальция в крови в зависимости от метода определения и используемого основного реактива. ^ 1. Необходимо исключить мышечную нагрузку в течение 3 дней, исключить из диеты вареное мясо, дичь, прием алкоголя, больших количеств аскорбиновой кислоты и аспирина. Методы определения креатинина: первая группа - основаны на реакции Яффе, в основе которого лежит реакция с пикриновой кислотой, после предварительного осаждения белков; вторая группа методов - представлена ферментативными методами; третья группа - аппаратные методы. 3. Потому, что с пикриновой кислотой в реакции Яффе через 30-40 секунд реагируют глюкоза, ацетон, а через 15-20 минут реагируют аскорбиновая кислота, пировиноградная кислота и некоторые другие вещества. 4. От пола, степени развития мускулатуры, возраста. 5. Увеличение креатинина характерно для далеко зашедшего процесса патологии почек. ^ 1. Соответствует, так как у больных сахарным диабетом наряду с гипергликемией отмечается значительно выраженная гиперлинемия, 2. Посуду, используемую для определения общих липидов нужно мыть отдельно. Помимо обработки и стерилизации по приказу N 408 МЗ ее для обезжиривания ополаскивают абсолютным этиловым спиртом, а затем высушивают. 3. После работы остатки биологической жидкости сливаются в отдельный контейнер с крышкой и засыпаются дезинфицирующим средством (хлорной известью) в соотношении 1:2, выдерживаются 1 час, затем сливаются в канализацию. 4. Методы определения общих липидов: а) гравиметрические; б) нефелометрические; в) окислительные; г) основанные на реакции с суданом черным; д) основанные на цветной реакции с сульфофосфорнованилиновым реактивом. 5. Можно. ^ 1. Нет, так как калибровочные графики и калибровочные таблицы строятся строго к определенным приборам. 2. Готовят 2-3 серии стандартных разведении из растворов сравнения I и II соответствующих определенным значениям единиц мутности тимоловой пробы по схеме, прилагаемой к методике, и определяют их оптические плотности. На миллиметровой бумаге на оси ординат равномерно откладывают значения тимоловой пробы, а по оси абсцисс - величины оптической плотности для каждого разведения. Затем наносят среднее значение оптических плотностей каждого разведения в сетку координат и через полученные точки проводят прямую линию. 3. Для паренхиматозной желтухи характерно повышение тимоловой пробы, а при обтурационной желтухе она обычно не повышается. 4. Наиболее часто проводят тимоловую пробу, формоловую, сулемовую, пробу Вельтмана. 5. Изменение осадочных проб основано на изменении соотношения «легких» и «тяжелых» фракций белков, при этом белки крови преципитируют скорее или медленнее, чем в норме. ^ 1. Результаты будут недостоверны, так как при попадании плазмы в пробирку с царапинами на стекле активируется фактор контакта, что приводит к гиперкоагуляции и завышению результатов. 2. Для проведения исследования системы гемостаза используются отдельные центрифужные пробирки. Для уменьшения контактной активации гемостаза используются пластиковые или стеклянные силиконированные пробирки. Для силиконирования пробирки заполняют 5% или 10% раствором силикона в толуоле на 5 -10 минут. Силикон сливают, а пробирки затем высушивают при температуре 180-2000 С. 3. Соотношение крови и антикоагулянта обычно 9:1, если гематокрит незначительно отличается от нормального. В других случаях соотношения подбирают по схеме. 4. Цитрат и оксалат натрия проявляют свою антикоагулянтную активность, связывая ионы кальция, и процесс свертывания крови в пробирках не активируется, так как ионы кальция важный фактор активации свертывания. 5. Нельзя, так как при гемолизе из эритроцитов выходят активаторы факторов свертывания и результаты завышаются. ^ 1. Heт, так как при длительном стоянии в пробирках для определения прямого билирубина в реакцию вступает непрямой билирубин. 2. В крови определяется общий билирубин, который представляет собой сумму свободного и связанного билирубина. Свободный билирубин - это комплекс билирубина с альбумином, не дающий с диазосмесью прямой реакции. Связанный билирубин - билирубиндиглюкоронид, дающий с диазосмесью прямую реакцию. 3. При вирусном гепатите В разгар заболевания общий билирубин повышается в основном за счет прямого и непрямого. 4. Так как прямой билирубин реагирует с диазосмесью быстро, т. е. в течение 5 мин, а при стоянии происходит самопроизвольная диссоциация свободного билирубина и он так же вступает в реакцию. 5. Акселераторы используют для ускорения диссоциации свободного билирубина. В качестве акселератора используют кофеин, мочевину, гидроксид натрия, этиленгликоль и другие вещества. ^
^ 1. Гемолиз может вызвать как завышение, так и занижение концентрации общего белка. В этих случаях при проведении анализа требуется постановка специальных холостых проб, содержащих сыворотку, эстинкция которых вычитается из экстинции пробы. 2. Кровь берется натощак. Рекомендуется 12-14 часовое голодание. Исключить физические нагрузки, длительное пребывание в положении стоя. 8 день исследования исключить бромсульфофталеи-новую пробу. 3. Общий белок в крови можно определять следующими методами: а) азотометрическим (по Кьельдалю); б) гравиметрическими; в) спектрофотометрическими; г) рефрактометрическими; д) фотометрическими, основанными па цветных реакциях с биуретовым реактивом и другими реактивами. 4. Принцип: белки реагируют в щелочной среде с сульфатом меди, при этом образуются соединения, окрашенные в фиолетовый цвет. 5. При построении калибровочного графика для определения общего белка готовят ряд разведений с содержанием общего белка от 20 до 100 г/л, по специальной схеме, указанной в методике. Из каждого разведения берут 0,1 мл раствора, добавляют 5 мл биуретового реактива и через 30 ми-нут фотометрируют, исследование повторяют 3-4 раза. По полученным данным строят калибровочный график, нанося значения оптической плотности проб в сетке координат. ^ 1. Сыворотка крови должна быть прозрачная, желтого цвета. Данная сыворотка с липемией, то есть, с большим количеством липидов, главным образом хиломикронов. 2. Данную сыворотку использовать нельзя, так как липиды будут мешать определению, выявляясь в виде дополнительной фракции. 3. Принцип: частицы белка перемещаются в электрическом поле постоянного тока (в щелочной среде - к аноду, в кислой -к катоду) с разной скоростью в зависимости от величины заряда и молекулярной массы. В щелочной среде наиболее быстро перемещаются альбумины, затем α1 -,α2 -, β – и γ - глобулины. 4. Электрофорез на ацетатной пленке имеет ряд преимуществ: а) четкость разделения фракций из-за однородности пленки; б) меньшее время электрофореза; в) легкая отмываемость фона; г) минимальная абсорбция белком пленки, а значит, высокая точность. 5. Количество выделенных фракций зависиит от поддерживающей среды. Белки сыворотки крови разделяются методом электрофореза на бумаге на 5 фракций: α1 -,α2 -, β – и γ - глобулины и альбумины. ^ 1. Да, можно, тик как концентрация мочевины в плазме и сыворотке практически одинаковая. 2. Пища накануне не должна содержать избыток белков, в то же время диета не должна быть низкокалорийной. Кровь берется натощак (после 12 часового голодания). Пациент не должен курить, принимать алкоголь накануне. Обследуемый находится в положении сидя или лежа. 3. Методы определения мочевины: а) газометрические; б) ферментативные с последующим определением аммиака или углекислою газа; в) фотометрические, основанные на реакции мочевины с различными веществами с образованием окрашенных соединений: наиболее распространены методы, основанные на реакции с диацетилмонооксимом. 4. Принцип: мочевина под воздействием уреазы разлагается с образованием аммиака и углекислого газа. Выделившийся аммиак образует с соответствующими реактивами окрашенный продукт. Интенсивность окраски пропорциональна содержанию мочевины. 5. Наиболее часто определение содержания мочевины проводят при заболеваниях почек, так при этом резко снижается выделение мочевины с мочой и концентрация мочевины в крови возрастает. То же самое наблюдается и при уменьшении почечного кровотока, механической задержке мочи. Уменьшение концентрации мочевины наблюдается при беременности, тяжелых заболеваниях печени, ведущих к нарушению ее синтеза. ^ 1. Гемолиз не допускается, так как снижает результаты при использовании глюкооксидазного метода. В случае гемолиза сыворотку депротеинируют, а затем определяют глюкозу в супернатанте. 2. Материалом для определения концентрации глюкозы является капиллярная кровь, венозная кровь, плазма, сыворотка, моча, спинно - мозговая жидкость. 3. В современных клинико-диагностических лабораториях используют следующие методы определе-ния глюкозы: а) редуктометрические - основанные на способности глюкозы восстанавливать соли металлов и другие соединения; б) ферментативные - основанные на окислении глюкозы в присутствии гексокиназы или глюкооксидазы; в) основанные на цветных реакциях глюкозы с различными веществами; г) аппаратные - с использованием субстратспецифичных электродов. 4. Принцип определения глюкозы: глюкоза в присутствии фермента глюкооксидазы окисляется кислородом воздуха с образованием в ходе реакции перекиси водорода. Количество перекиси водорода определяют либо химическим путем, либо по способности в присутствии пероксидазы окислять диамины с образованием окрашенных соединений. 5. Остатки хромовой смеси могут повлиять на результат, гак как хромовая смесь - сильный окислитель, который может окислить глюкозу до глюконовой кислоты и занизить результат. ЗАДА Ч А № 16. 1. За 3 дня отменяются инъекции глюкозы, кофеина, адреналина. В течение 3-х дней пациент не должен изменять привычного режима питания и мышечной нагрузки, получая диету, содержащую не менее 150 г углеводов в сутки, без избытка и ограничения жиров. В день, предшествующий проведению теста, последний прием пищи должен быть не позднее 20 часов, нельзя принимать алкоголь. Перед пробой необходимо 30 минут спокойно посидеть. Во время проведения пробы и перед ней нельзя курить. Необходимо следить за эмоциональным и физическим покоем . 2. Начинают не позже 10 часов утра. Пациент - может ходить, но должен быть под наблюдением медицинского техника. В начале проводят забор пробы капиллярной крови на содержание глюкозы строго натощак. Затем пациент выпивает в течение не более 3-х минут 250 мл теплой кипяченой воды с растворенными в ней 75 г глюкозы. Через 30,60,90,120 мин (допустимо - 60,90,120 минут) проводят повторные взятия крови и определение глюкозы, лучше гексокиназным методом. В конце пробы собирают мочу на наличие глюкозы. 3. ГТТ не проводится, если два раза натощак концентрация глюкозы выше 7,8 ммоль/л или один раз -выше 11,1 ммоль/л., а так же больным после инфаркта миокарда. 4. Гликемическую кривую строят, откладывая по вертикальной оси концентрацию глюкозы в ммоль/л, а на горизонтальной - время н минутах, прошедшее с момента приема глюкозы. Полученные точки соединяют. 5. Гемолиз крови недопустим, так как занижает результат исследования. ^
^ 1. Кровь берется строго натощак, после 12-14 часового голодания. Исключить из диеты сахар. Необходимо воздержание от приема алкоголя в течение 24 часов. За неделю до взятия крови из диеты следует исключить жиры, за 2 недели препараты снижающие уровень липидов. Больной не должен подвергаться стрессам. 2. Перед взятием крови больной должен посидеть в покое, так как концентрация холестерина уменьшается при изменении положения тела 3. Самым точным методом определения считается ферментативный, основанный на действии холестериноксидазы, в результате чего образуются холестенон и перекись водорода. Менее точны методы, основанные на цветных реакциях на холестерин. Широкое распространение получили реакции Либермана-Бурхарда и Златкиса-Зака. Первый метод основан на том, что в сильнокислой среде в присутствии уксусного ангидрида от холестерина отщепляется вода и образуется окрашенное в зеленовато-синий цвет соединение. Метод Златкиса-Зака основан на том, что при окислении холестерина хлорным железом в концентрированной серной кислоте развивается красно-фиолетовое окрашивание. Эта реакция в 4-5 раз чувствительнее, чем реакция Либермана-Бурхарда, но менее специфична, поскольку широкий круг веществ (витамин А), дает такое же окрашивание, как и холестерин. 4. Половые гормоны синтезируются из холестерина, поэтому уровень холестерина зависит от активности синтеза их. Поэтому при снижении синтеза эстрогенов и других половых гормонов содержание холестерина в крови возрастает и наоборот. 5. Определение холестерина ведут в отдельной посуде. После обработки и обеззараживания и стерилизации согласно приказу № 408 МЗ СССР её ополаскивают абсолютным этанолом и высушивают. ^ 1. Венозную кровь набирают в стеклянную несиликонированную или пластиковую пробирку. Ставят на 15 минут в термостат при температуре 370С или выдерживают при комнатной температуре (15-250 С) до полного образования сгустка. Затем обводят сгусток крови по стенке пробирки пастеровской пипеткой или тонкой стеклянной палочкой для отделения сгустка. Жидкую часть сливают и центрифугируют при 1500 оборотов в минуту 10-15 минут (или центрифугируют в этой же пробирке). Образовавшийся супернатант быстро отсасывают пастеровской пипеткой в чистую сухую центрифужную пробирку. 2. Забор крови должен быть проведен строго натощак после 12 часового голодания. Накануне нельзя заниматься физическими упражнениями, принимать алкоголь, сахар. Перед забором крови необходимо немного посидеть. 3. Типирование классов липопротеидов проводится несколькими методами: а) дискэлектрофорез; б) электрофорез на ацетатной пленке; в) ульфацентрифугирование; г) гравиметрический; д) нефелометрические. 4. Большая часть холестерина в крови содержится в липопротеидах низкой плотности. Между их концентрацией в крови и концентрацией холестерина в ней существует прямая зависимость: при повышении уровня ЛПНП повышается и уровень холестерина и наоборот. 5. Определение липидов ведут в отдельной посуде. После обработки, обеззараживания и стерилизации согласно приказу № 408 МЗ СССР её ополаскивают абсолютным этанолом и высушивают. ^ 1. Свернувшуюся в пробирке кровь аккуратно обводят стеклянной палочкой, отделяя от стенок пробирки. Для получения сыворотки кровь центрифугируют при 1500 оборотов в минуту в течение 10-15 минут. После центрифугирования сыворотку следует быстро отделить от сгустка и форменных элементов крови. 2. Кровь берется у пациента натощак после 12-14 часового голодания. Накануне исключается прием алкоголя и богатой жирами и углеводами пищи. 3. Нарушение рекомендаций по приему пищи приводит к тому, что приготовленная сыворотка приобретает мутность, то есть становится хилёзной. Хилёзность завышает результаты анализов. 4. При определении общих липидов посуду следует обезжиривать. Для этого посуда ополаскивается абсолютным спиртом. 5. В системе СИ количество общих липидов выражается в г/л. ^ 1. Необходимо отбирать в положении сидя, нельзя накладывать жгут, работать рукой, так как пережатие сосудов более, чем на 1 минуту, и работа рукой вызывают повышение концентрации калия. 2. В данном случае похлопывание по руке и длительное наложение жгута. 3. Калий - внутриклеточный элемент, поэтому разрушение эритроцитов при гемолизе приводит к увеличению концентрации его в сыворотке. 4. В сыворотке, плазме, эритроцитах, цельной крови, суточной моче, слюне, спинномозговой жидкости. 5. Тщательно полоскать посуду, бидистиллированной водой, так как загрязнение лабораторной посуды моющими и дезинфицирующими средствами ведет к завышению результата, так как мыла-это каленные и кальциевые соли жирных кислот. ^ 1. Сыворотка имеет видимые признаки гемолиза. 2. Данную сыворотку использовать для определения активности трансаминаз нельзя, так как даже следы гемолиза влияют на результат исследования, завышая результат в связи с дополнительным выбросом ферментов из эритроцитов. 3. Наиболее вероятные причины гемолиза в данном случае: а) сильная механическая тряска при транспортировке в трамвае; б) резкая смена температуры окружающего воздуха при доставке с улицы в лабораторию. 4. Источниками ошибок при определении активности трансаминаз являются: а) нарушение соотношения буферного раствора, субстратов и сыворотки; 6) не оптимальная рН инкубационной смеси; в) не соблюдение оптимальной температуры (+370 С) во время инкубации; г) использование просроченных наборов реактивов для определения; д) неправильное хранение субстратов. 5. Коэффициент де Ритиса - это отношение активности аспартатаминотрансферазы (АсТ) к активности аланинаминотрансферазы (АлТ). У здорового человека он равен 1,33. При болезнях печени снижается, а при болезнях сердца - увеличивается. ^ 1. Нет, так как подготовка пациента к исследованию должна длится не менее трёх дней. 2. В течение трех суток до исследования пища не должна содержать много белков и пуринов. Накануне и перед забором крови должны быть исключены физические упражнения, воздействие солнечного и ионизирующею излучения, прием алкоголя, кофе. 3. При заборе венозной крови наложение жгута должно быть не больше, чем на 30 секунд, а в качестве дезинфицирующего средства должен использоваться 70% водный раствор изопропанола, а не 70% этанол, использование которого завышает результат. 4. Методы определения мочевой кислоты в крови: а) ферментативный, основанный на расщеплении мочевой кислоты уриказой; б) прямые оптические спектрофотометрические методы; в) основанные на способности мочевой кислоты восстанавливать фосфорно-вольфрамовый реактив с образованием продуктов, окрашенных в синий цвет. 5. Трихлоруксусная кислота используется для осаждения белков крови, мешающих определению мочевой кислоты. ^ 1. Нет, так как для обеспечения достоверных результатов необходима подготовка не менее, чем в течение трех дней. 2. В течение трех дней из диеты исключаются печень, почки, сердце, фасоль, продукты из ржи, сои, проса, проросших зерен пшеницы. Исключают прием аспирина, аскорбиновой кислоты. Накануне исключают прием алкоголя и физическую активность. 3. Посуда, используемая для определения железа, должна быть отдельной. Посуду рекомендуется промывать 1% раствором ЭДТА или замачивать на ночь в растворе трилона Б с аммиаком (1 : I) с последующим промыванием 5 N соляной кислотой и ополаскиванием деминерализированной или бидистиллированной водой. 4. Методы определения железа в основным основаны на цветной реакции с батофенантролином (после осаждения белков крови) с образованием окрашенного соединения. 5. Плазму использовать для определения железа нельзя, так как применяемые антикоагулянты могут завысить (гепарин и его соли) или занизить (оксалат натрия, цитрат натрия, ЭДТА) результаты. ^ 1. Гемолизированную сыворотку для определения натрия использовать нельзя, так как результаты будут занижены вследствие разбавления сыворотки внутриклеточной жидкостью, содержащей мало натрия. 2. Внутрилабораторные причины гемолиза: а) слишком низкая или слишком высокая температура воздуха в помещении лаборатории; б) механическая тряска пробирки с кровью; в) раннее отделение сгустка крови; г) грубое отделение сгустка крови с помощью толстой стеклянной палочки. 3. За 3 дня до анализа из рациона исключают соль, колбасы, ветчину, сыр. Исключаютфизические нагрузки и прием алкоголя не менее, чем на 24 часа. Кровь берут натощак, после 12-ти часового голодания. 4. Метод основан на способности атомов возбуждаться и излучать лучи света определенной длины, которые определяются фотометрически. 5. Натрий определяют в плазме, сыворотке, моче, спинно - мозговой жидкости, поте и слюне. ^ 1. Клиренс - коэффициент очищения, показывающий какой объем плазмы очищается почками от данного вещества в 1 минуту. 2. Для определения клиренса креатинина определяют содержание креатинина в моче и в крови, одновременно определяя минутный диурез. 3. Подготовка больного к определению клиренса креатинина: а) за 3 дня исключить физические нагрузки, упражнения; б) диета в течение 3-х дней не должна содержать вареного мяса, чая, кофе; в) в течение 3-х дней, предшествующих пробе, не проводят рентгеноконтрастных исследований; г) за 3 дня исключить прием больших количеств аскорбиновой кислоты, парацетомола, аспирина, анаболических стероидов, тироксина, АКТГ, кортизола и некоторых других лекарств. 4. Проведение пробы Реберга: исследуемый натощак выпивает 400 мл слабого чая и мочится. Эту порцию мочи не исследуют, но замечают время мочеиспускания. Затем собирают мочу, выделенную в течение 1-2 часов, и измеряют ее объем. В середине этого интервала проводят забор венозной крови. Проводят определение концентрации креатинина в моче и крови. По объему выделенной мочи устанавливают минутный диурез и проводят расчеты. 5. Так как креатинин не реабсорбируется и не секретируется в почках, по клиренсу судят о величине почечной клубочковой фильтрации в мл. При заболевании почек она снижается. ^ 1. Психические нагрузки, стресс значительно изменяют содержание глюкозы в крови через "встряску" гормонов. При стрессе выделяются адреналин, повышающий уровень глюкозы в крови и меняющий концентрацию других компонентов крови. 2. Под влиянием стресса изменяется содержание фибриногена, альбуминов, холестерина, свободных жирных кислот и др. 3. Необходимо было успокоить ребенка, вывести из лаборатории, дать отдохнуть 30 минут, потом повторить попытку забора крови. При невозможности избежать стресса - предложить прийти послезавтра. 4. Определение нужно проводить глюкооксидазным методом. Провести депротеинирование сыворотки добавлением депротеинирующих веществ, лучше ацетата уранила, и определить содержание глюкозы в супернатанте. 5. Нормы зависят от методики определения, обычно они в пределах 3,3 – 5,55 ммоль/л. ^ 1. Это М-градиент, названный так по первой букве миеломной болезни - заболевания, при котором он чаще всего обнаруживается. 2. М-градиент связан с появлением в крови парапротеинов - патологических белков, по своим физико-химическим свойствам сходных с иммуноглобулинами, но не проявляющих антительной активности. 3. Этапы обработки фореграмм на ацетатной пленке: а) высушивание на воздухе; б) фиксация при температуре 100° С; в) окрашивание в растворе красителя; г) отмывание красителя; д) высушивание на воздухе; е) просветление; ж) измерение на денситометре и расчет. 4. Плазма крови не используется для определения белковых фракций из-за присутствия фибриногена, дающего пик в области γ-глобулинов и могущего замаскировать М-градиент. 5. При дискэлектрофорезе белки плазмы крови можно разделить на 30 фракций, а не на 5, как при электрофорезе на ацетатной пленке. ^
а) контрольные материалы промышленного изготовления с известным значением контролируемых параметров; б) контрольные материалы промышленного производства с не известными значениями контролируемых параметров; в) контрольные материалы, изготовленные в лаборатории из остатков образцов пациентов - слитые сыворотки, моча, плазма.
^
а) химические (колориметрические, гравиметрические и др.); б) пламенная фотометрия; в) атомно-абсорбционная фотометрия; г) с помощью ионоселективных электродов и др. ^
физиологическим раствором в 2-4 раза, повторить определение и полученный результат умножить на величину разведения.
m = 1000 = 1000 = 1,60 г
а) вспенивание при внесении сыворотки; б) несоблюдение времени экспозиции; в) экспозиция на свету; г) использование просроченных реактивов; д) не разведение сыворотки для повторного исследования; е) неправильное построение калибровочного графика.
^
^
^
![]() Протромбиновое время плазмы больного МИЧМНО= Протромбиновое время плазмы здоровых ^
а) подготовки обследуемых к анализу; б) получения биологической жидкости; в) транспортировки биологической жидкости в лабораторию; г) подготовки и получения биологической жидкости, из которой непосредственно будет взята проба для проведения анализа.
а) подготовка пробы; б) качество используемых реактивов; в) подготовка и построение калибровочного графика; г) процесс измерения пробы. ЗАДА ЧА № 36.
связываются с транспортными белками, влияют на метаболизм в печени и почках, резорбцию и всасывание питательных веществ в кишечнике и влияют на аналитический этап определения.
а) забор строго натощак; б) последний прием пищи за 12 часов до взятия проб; в) время взятия с 7 до 9 часов утра; г) исключение алкоголя не менее, чем за 24 часа до взятия биологической жидкости; д) забор проб до принятия лекарств; е) забор проб до проведения диагностических и лечебных процедур; ж) исключить физическую и мышечную нагрузку на 3 дня; з) сдавление сосудов жгутом не более 1 минуты; и) обследуемый должен находится в покое, сидеть или лежать не менее 5 минут до забора.
а) Расчет сухого вещества: 2000 * 0,9 в 100 г - 0,9 г NaCI х = 100 = 18 г в 2000 г - х г б) Расчет дистиллированной воды. 2000 г - 18 г- 1982г. ^
^ 1. Нет, активность α-амилазы определяют в свежесобранной моче, так как при стоянии мочи актив- ность α-амилазы в ней падает. 2. Принципы амилокластических методов определения активности α-амилазы основаны на определении остатков нерасщепленного крахмала по степени интенсивности его окраски с йодом. 3. Рабочий 0,01 N раствор йода готовят из 0,1N основного раствора йода, который готовится из фиксанала. Если рабочий раствор йода готовится с добавлением фтористого калия, он устойчив и хранится в холодильнике в темной посуде в течение 2-х месяцев, без добавления фтористого калия рабочий раствор готовится ежедневно. 4. Раствор йода используется для образования цветного комплекса с крахмалом и для остановки ферментативной реакции, катализируемой α-амилазой. 5. При определении активности липазы кровь берется натощак в положении сидя или лежа. Недопустимо курение и прием алкоголя накануне, так как эти факторы завышают активность фермента. ^
а) несоблюдение времени, температуры и объемов приливания реактивов; б) нарушение привил приготовления и хранения реактивов; в) отсутствие замораживания малых объемов замораживания субстратов; г) использование реактивов с просроченным сроком годности; д) несоблюдение этапов исследования, особенно задержка с определением оптической плотности.
^
^ ЗАДАЧА № 1. Мать, ребенка Н. 2-х лет, жалуется, что у него частый жидкий стул с резким неприятным запахом, он плохо ест, капризничает. При посеве испражнений на среду Плоскирева обнаружены желтоватые полупрозрачные колонии с ровными краями, а на среде Эндо - сплошной вуалеобразный налет по всей поверхности чашки, резкий неприятный запах. |