|
Скачать 1.83 Mb.
|
4 этап. А. Учет и анализ результатов. Учитывают результаты изучения биохимических, серологических, генетических и др. характеристик и сравнивают их со свойствами эталонных (типовых) штаммов различных видов микроорганизмов. Относят идентифицируемый микроорганизм к тому виду, с которым он проявляет наибольшее сходство. Учитывают спектр чувствительности к противомикробным препаратам. Б. Выдача заключения. Оформляют заключение, которое представляет собой заверенный бланк с данными о пациенте, исследованном материале, выделенных видах микроорганизмов (в случае выделения УПМ необходимо указывать количество), спектре их чувствительности к противомикробным препаратам. ^ Среди облигатных анаэробов выделяют спорообразующие анаэробы клостридии (возбудители ботулизма, столбняка, газовой гангрены) и неспорообразующие (неклостридиальные) пептококки, пептострептококки, вейлонеллы, пропионобактерии, бактероиды, порфиромонады, превотеллы, фузобактерии. 1 этап. А. Забор материала и транспортировка с использованием транспортных систем для анаэробов. Б. Микроскопическое исследование материала (в материале присутствуют полиморфные микроорганизмы, либо грубые грамположительные палочки с обрубленными концами). В. Предварительная обработка материала методами температурного или алкогольного шока для выделения спорообразующих анаэробов. ^ течение 1 часа при комнатной температуре (22250С) при постоянном перемешивании выдерживают смесь равных объемов абсолютного (или 96%) этилового спирта и исследуемого материала (суспензия фекалий, раневой экссудат). ^ в подогретую на водяной бане при 800С в течение 5 минут пробирку со средой из рубленого мяса с глюкозой и крахмалом (chopped meat-glucose-starch medium) добавляют 1 мл суспензии соответствующего образца. Экспонируют пробу в течение 10 минут, а затем извлекают пробирку и охлаждают перед посевом в холодной воде. Г. Посев материла на анаэробный кровяной агар и на элективные, дифференциально-диагностические среды (анаэробный кровяной агар с гентамицином или анаэробный кровяной агар с неомицином и налидиксовой кислотой) с целью получения изолированных колоний. Посевы инкубируют 2448 часов при 370С в анаэробных условиях (в анаэробной камере, либо в микроанаэростате, либо в анаэробном пакете). Д. Посев материла в жидкую тиогликолевую среду с целью определения летучих жирных кислот. 2 этап. А. Изучение морфтипов колоний на кровяном анаэробном агаре. Колонии анаэробов слизистые, выпуклые, мелкие, полупрозрачные, с серо-белыми, преимущественно ровными краями. Колонии пигментирующих видов превотелл, порфиромонад, пептококков и пептострептококков приобретают светло-коричневое или черно-коричневое окрашивание на 714 сутки инкубации на средах, содержащих кровь. Колонии бактероидов на кровяном агаре могут давать зоны -гемолиза. Колонии Clostridium perfringens могут обуславливать двойной гемолиз: 1 зона (внутренняя) -гемолиз, 2 зона (внешняя) -гемолиз. Роящийся рост типичен для C. septicum, C. tetani. C. difficile образуют колонии в виде битого стекла, могут иметь круглую или неправильную форму со слегка волокнистыми краями. Колонии Fusobacterium spp. имеют желтоватый или желто-кремовый оттенок. Б. Хроматография тиогликолевой среды и индикация анаэробов в среде по наличию летучих жирных кислот. В. Микроскопия колоний. Г. Изучение флюоресценции колоний с помощью лампы Вуда. В проходящем длинноволновом УФ-свете (365 нм) представители рода Prevotella дают ярко-красную флюоресценцию, рода Porphyromonas и C. difficile - желто-зеленую флюоресценцию. Д. Посев изолированных колоний с целью определения их чувствительности к кислороду. Селективные анаэробные среды не всегда эффективно ингибируют рост сопутствующей факультативно-анаэробной микрофлоры, в связи с чем, на втором этапе бактериологического исследования подтверждают чувствительность исследуемой культуры к кислороду. Для этого намеченные для дальнейшего бактериологического исследования колонии высевают параллельно на сектора на две чашки Петри, одну из которых инкубируют в анаэробных условиях, а другую в аэробных (рис. 24). ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() 1 2
5 4 ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() Культуры 1, 2, 5 подвергают дальнейшему бакисследованию ![]() инкубация в аэробных условиях ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() 1 2 6 3 5 4 ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() ![]() инкубация в анаэробных условиях Рис. 24. Подтверждение чувствительности исследуемой культуры к кислороду Посев на сектора осуществляют для всех морфотипов колоний; в случае однотипности колоний пересевают не менее пяти колоний. Посев на сектора позволяет также накопить чистые культуры анаэробных микроорганизмов, что важно на дальнейших этапах идентификации и определения чувствительности к антимикробным средствам. Посевы инкубируют 24 – 48 часов при 370с. 3 этап. На третьем этапе исследуют свойства культур, для которых подтверждена чувствительность к кислороду. А. Определение чистоты культуры анаэробов в мазке по Граму. Б. Окончательная идентификация чистой культуры анаэробов на основании биохимических признаков и спектра летучих жирных кислот. Ориентировочная идетификация до рода проводится с использованием ограниченного числа тестов, развернутая идентификация до вида – с использованием широкого спектра тестов. Изучение биохимических признаков предпочтительно с использованием коммерческих тест-систем для биохимической идентификации анаэробов, которые позволяют проводить относительно точную видовую идентификацию. Большинство тест-систем применяются в комплексе с компьютеризированным банком данных биохимических профилей различных видов анаэробов, что упрощает процесс идентификации микроорганизмов. В. Определение спектра чувствительности к антибиотикам. 4 этап – аналогично выделению аэробов и факультативных анаэробов. А. Учет и анализ результатов. Б. Выдача заключения. Оценка БЛМИ. Достоинства:
Недостатки:
^
|