Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк





Скачать 1.83 Mb.
Название Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк
страница 9/10
Ж. Г. Шабан
Дата 25.03.2013
Размер 1.83 Mb.
Тип Документы
1   2   3   4   5   6   7   8   9   10
^
Некоторые резистентные формы микроорганизмов, получающие эпидемическое распространение.
Антибиотикорезистентные S. pneumoniae (АРП) - пневмококки, резистентные к антибактериальным препаратам трех и более классов (например, к пенициллину, ко-тримоксазолу и макролидам).
Бактерии, продуцирующие β-лактамазы расширенного спектра действия (БЛРС), способны инактивировать β-лактамные антибиотики различных классов, включая пенициллины и цефалоспорины I-IV поколений, кроме цефамицинов (цефокситин, цефотетан) и карбапенемов.
Бактерии, продуцирующие β-лактамазы широкого спектра действия, способны инактивировать пенициллины, включая аминопенициллины (ампициллин, амоксициллин), антисинегнойные пенициллины (карбенициллин, пиперациллин и др.), цефалоспорины I и отчасти II (цефаклор) поколений.
Ванкомицинорезистентные энтерококки (VRE) Enterococcus spp. для которых МИК для ванкомицина составляет 32 мг/л и более.
Метициллинорезистентный S. aureus (MRSA) S. aureus, резистентные к метициллину (оксациллину), которые содержат ген mecA, обусловливающий продукцию измененного пенициллинсвязывающего белка ПСБ-2. ПСБ-2 плохо связывает β-лактамные антиботики и они не транспортируются в бактерии. MRSA устойчивы ко всем β-лактамным антибиотикам и обычно резистентны к антибиотикам других классов, поэтому их называют «множественно-резистентные стафилококки».
S.aureus с промежуточной резистентностью к ванкомицину или S.aureus с промежуточной резистентностью к гликопептидам S.aureus, которые характеризуются значениями МИК ванкомицина 816 мг/л.


^ БИОЛОГИЧЕСКИЙ (ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫЙ) МЕТОД ИССЛЕДОВАНИЯ

Биологический (экспериментальный) метод исследования (ЭСМИ) - совокупность способов искусственного воспроизведения клинической картины инфекционных болезней или их синдромов на лабораторных животных.

Цели ЭСМИ.

  1. Выделение и идентификация чистой культуры микроорганизмов, если её невозможно получить на питательных средах:

а) из-за большого количества в материале посторонней микрофлоры, обладающей ингибиторным действием (например, выделение возбудителя чумы из разлагающихся трупов грызунов);

б) для выделения микроорганизмов, которые на питательных средах не растут (риккетсии, вирусы).

  1. Определение вирулентности и патогенности микроорганизмов.

  2. Индикация и идентификация экзотоксинов.

  3. Изучение патогенеза инфекционных болезней при воспроизведении экспериментальных инфекций.

  4. Производство биологических препаратов (профилактических, диагностических и лечебных сывороток, вакцин, культур тканей).

  5. Проверка безвредности и эффективности лечебных препаратов (химиопрепаратов, иммунопрепаратов).

  6. Лабораторные животные служат донорами крови для приготовления кровяных питательных сред и проведения исследований, связанных с использованием крови и её ингредиентов.

^ Этапы ЭСМИ.

1 этап ЭСМИ. Взятие и обработка материала.

К выполнению экспериментальных исследований на животных допускаются лица, имеющие высшее медицинское, медико-биологическое, фармацевтическое, ветеринарное, зоотехническое или биологическое образование, после того как они освоили правила обращения с лабораторными животными и приобрели практические навыки.

Материал для исследования забирается в асептических условиях, в стерильную посуду, гомогенизируется и используется для заражения возможно быстрее.

^ 2 этап ЭСМИ. Выбор и заражение лабораторного животного.

Выбор лабораторного животного. В медико-биологических исследованиях используется около 250 видов животных.

^ Нелинейные животные. Одни виды постоянно разводят в лабораториях, питомниках и предприятиях по производству биопрепаратов, это так называемые лабораторные животные: белые мыши, белые крысы, морские свинки, кролики, хомяки, кошки, собаки, обезьяны, бараны, лошади. Других животных периодически отлавливают для эксперимента (полевки, песчанки, суслики, хорьки, сурки, лемминги). От общего числа лабораторных животных на долю белых мышей приходится около 70%, белых крыс – 15%, морских свинок – 9%, кроликов – 2%.

^ Линейные животные. Методом тесного инбридинга (внутриродственного скрещивания) удалось вывести более 200 линий мышей, свыше 20 линий крыс, 7 линий морских свинок, несколько линий кроликов. Среди диких животных чистых линий не существует. На выведение линий затрачивается не менее 8–10 лет тщательно выполняемой работы. С целью выведения определённой линии лабораторных мышей, крыс или других животных осуществляют братско-сестринское скрещивание на протяжении более 20 последовательных поколений и лишь тогда достигают 100% гомозиготности. Линейные (инбредные) животные ценны тем, что являются генетически однородными и отличаются от нелинейных животных постоянными реакциями на воздействие физиологических, химических и патогенных факторов. Каждой линии присущи свои передающиеся по наследству особенности и свойства (повышенная или пониженная чувствительность к возбудителям инфекционных заболеваний, опухолям). По рекомендации международного комитета по стандартизации генетической номенклатуры названия линий пишутся заглавными латинскими буквами. В заглавии линии заложено её происхождение, год создания какой-либо особенности животных данной линии. Напр., среди белых мышей наиболее распространены линии A, CBA, BALB, BAJJ, C57BL, C57BR, C58, C3H.

Линейные лабораторные животные очень чувствительны к неблагоприятным факторам окружающей среды, поэтому условия содержания их должны быть лучше, чем нелинейных животных.

Потомство линейных животных, у которых в силу различных причин прекращено разведение методом инбридинга теряет линию, так как у них накапливаются мутации, а гомозиготность понижается. Уменьшение гомозиготоности при этом прогрессирует от поколения к поколению, а специфические для данной линии признаки могут быть потеряны, ослаблены или извращены.

^ Животные-гнотобионты и животные-гнотофоры. Как линейные, так и нелинейные животные являются носителями возбудителей многих вирусных, бактериальных, грибковых заболеваний, которые затрудняют выполнение точных исследований. В процессе эксперимента, особенно длительного, присутствующие в организме животного возбудители могут активироваться и извратить характер реакции на испытуемый агент. В связи с этим возникла потребность получения лабораторных животных, лишённых микроорганизмов (гнотобионтов) или имеющих в организме контролируемую микрофлору (гнотофоры). Животных-гнотобиотов получают от беременных самок, которым проводят кесарево сечение в определённый период перед родами. Новорожденных помещают на утеплённые подстилки в клетки. Корм, воду, подстилку и другие материалы, необходимые для обеспечения жизнедеятельности безмикробных животных, подвергают стерилизации в автоклавах. Животных-гнотобиотов содержат в стерильных условиях в течение всей их жизни. В гнотобиотических изоляторах получены безмикробные мыши, крысы, морские свинки, хомячки, кролики, кошки, собаки, ягнята, козлята, поросята, обезьяны.

Выбор вида, линии, возраста и пола животных диктуется целями исследований. Отобранных животных тщательно осматривают, больных выбраковывают. Перед проведением эксперимента все животные должны быть выдержаны в виварии на 2-х недельном карантине.

Животные, взятые в эксперимент, должны быть здоровы, чувствительны к предполагаемому возбудителю, однородны по породе, линии, массе, возрасту, полу, упитанности, промаркированы.

Основные способы маркировки лабораторных животных:

– татуировка ушей тушью у животных, имеющие большие непигментированные ушные раковины (кролики, свинки, крысы, мыши);

– мечение мышей и крыс краской (насыщенным раствором пикриновой кислоты, 0,5% раствором генцианвиолета, фуксином, эозином);

– с помощью колец или жетонов из мягкой белой жести, которые закрепляют на ушах или лапках (так маркируют новорожденных лабораторных животных).

Фиксация животных при проведении исследований.

Кролики отличаются от других лабораторных животных спокойствием и относительно слабым сопротивлением при фиксации. Для фиксации их привязывают к специальным станкам или столам. Следует иметь в виду, что при сильном запрокидывании головы у кроликов легко наступает смерть от удушья. Помощник может зафиксировать кролика двумя руками: левой рукой за кожу спины в области затылка, правой – за кожу в области крестца. Кролика можно опеленать куском прочной материи. Удобен также способ фиксации с помощью индивидуального иммобилизационного станка, ящика с круглой прорезью в передней стенке.

Фиксация морских свинок не представляет затруднений. Левой рукой животное удерживают за спину и грудь так, чтобы большой и указательный пальцы охватывали шею, а другие пальцы передней руки обездвиживали передние конечности и ограничивали движения головы, правой рукой снизу удерживают заднюю часть тела и обездвиживают животом вверх.

Фиксация белых крыс обычно является наиболее сложной. Животное берут за кожу спины или хвост. Помощник левой рукой берет крысу за кожу в области затылка и фиксирует этим голову и передние конечности, а правой рукой удерживает задние конечности и хвост. После этого животному придают нужное положение. Для фиксации крыс предложен ряд приспособлений – сетки, цилиндры, гильзы.

У белой мыши захватывают кожу спины на затылке большим и указательным пальцами левой руки, а остальными пальцами этой же руки удерживают задние конечности и хвост. Эти же манипуляции можно выполнять раздельно двумя руками. Фиксированное животное располагают в нужном положении.

Методы заражения лабораторных животных.

Применяют следующие методы заражения животных: накожный, внутрикожный, подкожный, внутримышечный, внутривенный, пероральный, интраназальный, внутриполостной (в брюшную полость, в грудную полость, в переднюю камеру глаза), внутриорганный (в мозг, в лёгкие).

Способ заражения зависит от вида материала, вида животного, тропизма микроба.

Участок кожи, где проводится манипуляция, обрабатывают в такой последовательности:

  • выщипывают или выстригают (выбривают) шерсть;

  • удаляют остатки шерсти депилятором;

  • участок кожи подвергают антисептической обработке одним из способов (спиртом, спиртом в смеси с эфиром 1:1, 10% настойкой йода).

Материал вводят с соблюдением правил асептики. При болезненных вмешательствах предварительно проводят анестезию.

Накожный метод. На кожу спины или живота, освобождённую от шерсти, наносят царапины скарификационной иглой. Материал берут стеклянной палочкой и втирают досуха.

Внутрикожный метод. Местом введения обычно выбирают кожу спины или живота. Шерсть на этом месте за два дня до опыта удаляют депилятором. Используют очень тонкие и острые иглы с пологим скосом. Иглу вводят в кожу под очень острым углом скосом вверх. Инъецируют до 0,1 мл раствора. Образовавшееся вздутие («лимонная корочка») не исчезает 3–5 минут.

Подкожный метод. Иглу шприца вводят в основание кожной складки предполагаемого места инъекции. После прокола кожи направление иглы меняют и медленно вводят жидкость – мышам не более 1,0 мл, морским свинкам и крысам –1,5 мл, кроликам –3,0 мл, место введения обрабатывают антисептиком. Следят за тем, чтобы введенный материал не вытекал наружу.

Внутримышечный метод. Лучшим местом введения считается участок с развитым мышечным слоем в области верхней трети задней лапы животного. Острие иглы направляют почти перпендикулярно участку.

Внутривенный метод. Инъекцию производят в краевую вену уха кроликов, яремную вену морских свинок, хвостовую вену крыс или мышей. Обрабатывают кожу над веной. Для лучшего наполнения вены ее пережимают ниже будущего введения или кожу обогревают теплой (550С) водой. Материал вводят медленно.

Пероральный метод. Объём жидкости, вводимой перорально, зависит от вида и возраста животного.

Кроликов и морских свинок пеленают и располагают в положении, близком к вертикальному. Материал вводят принудительно с помощью тонкого эластичного зонда. Процесс введения зонда требует навыков. Перед введением зонда животному вставляют роторасширитель с отверстием в середине. Продвижение зонда по пищеводу обычно не вызывает затруднений, если его конец смазан вазелином, а у животного вызывают глотательные движения закапыванием в рот нескольких капель воды. Через воронку или шприц жидкость вливают в желудок.

Крыс или мышей помощник фиксирует в вертикальном положении, рот открывают браншами пинцета. Жидкость можно вводить двумя способами: а) шприцем со специальной изогнутой иглой, конец которой утолщен в виде шарика с боковым отверстием; б) шприцем с обычной иглой, на которую насажен тонкий эластичный зонд.

Интраназальный метод. Животное фиксируют, с помощью эфира или хлороформа вызывают состояние лёгкого наркоза. Материал вводят в нос животному маленькими каплями шприцем и иглой с насаженным тонким зондом. Материал можно капать непосредственно на нос животного, контролируя его попадание в носовые ходы.

Внутрибрюшинный метод. Инъекцию производят в задней трети живота. Место введения обрабатывают антисептиком до и после инъекции. Животное располагают вниз головой или в наклонном положении. Несколько отступив от средней линии, брюшную стенку прокалывают, вводят иглу под тупым углом к стенке. Игла должна быть с притупленным концом во избежание повреждения внутренних органов.

3 этап ЭСМИ.

А. Наблюдение за животным. В период наблюдения за животным должен быть обеспечен надлежащий уход; методика наблюдения зависит от ожидаемого эффекта:

а) при определении вирулентности, токсигенности, токсичности наблюдают появление инфильтратов или учитывают гибель животного;

б) при этиологической диагностике наблюдают за возникновением признаков заболевания; берут материал для бактериологического и серологического исследования, соблюдая правила асептики; ставят аллергические пробы.

Б. Гибель (умерщвление) животного и вскрытие трупа.

Между смертью и вскрытием трупа животного должно проходить как можно меньше времени, так как кишечная флора даже при температуре холодильника проникает в ткани, кровь, органы через 20–27 часов. Более целесообразно умерщвлять животное в агональный период.

Животные, которые подвергались в эксперименте воздействиям, поведшим за собой понижение жизнеспособности, подлежат умерщвлению гуманным методом (эвтаназии). Эвтаназия не должна выполняться в помещении, в котором находятся другие лабораторные животные. Умерщвление часто осуществляется путём декапитации с использованием специальных гильотин, путём передозировки наркотических веществ (эфира, хлороформа, барбитуратов), электрическим током, воздушной эмболией (внутривенным введением воздуха), полным обескровливанием при использовании различных методов обезболивания.

При вскрытии труп кролика фиксируют на специальной доске за вытянутые лапы. Трупы морских свинок, крыс, мышей можно прикалывать старыми инъекционными иглами к парафиновой пластине в эмалированном лотке. Всю шерсть животного смачивают дезинфектантом (спирт, 5% карболовая кислота, 5% хлорамин). Кожу разрезают по средней линии живота от симфиза до подбородка. На уровне передних и задних лап делают боковые разрезы. Кожу отсепаровывают, отворачивают в стороны и прикалывают к пластине.

^ Ход вскрытия зависит от задач исследования: изучают паталогоанатомическую и патоморфологическую картину, делают посев органов для выявления обсеменённости и выделения чистой культуры, из внутренних органов готовят мазки-отпечатки.

Вскрытие начинают с грудной полости, вырезая грудину. Если в грудной полости есть экссудат, из него делают мазки и посев. Кровь из сердца забирают проколом пастеровской пипеткой с оттянутым капиллярным концом. Проводят осмотр органов грудной полости и при необходимости забирают из них кусочки ткани. Далее вскрывают брюшную полость. При наличии экссудата его засевают в питательную среду. Затем тщательно осматривают и исследуют органы брюшной полости. Взятие материала из паренхиматозных органов проводят следующим образом: поверхность органа прижигают нагретым в пламени спиртовки скальпелем; прижжённый участок органа прокалывают стерильной пастеровской пипеткой с оттянутым концом или стерильной петлей; взятый материал засевают.

Все этапы работы с лабораторными животными регистрируют в специальном журнале с графами:

  • Вид лабораторного животного.

  • Цель заражения.

  • Время заражения.

  • Материал, примененный для заражения.

  • Изменение поведенческих реакций животного после заражения.

  • Время гибели (умерщвления) животного.

  • Изменения, обнаруженные при вскрытии.

  • Материал, взятый для посева.

  • Свойства микроорганизма.

  • Вид микроорганизма.

После вскрытия труп животного сжигают, автоклавируют или кипятят 1–2 часа в растворе фенола; инструменты дезинфицируют, очищают, затем стерилизуют. Трупы животных, павших от особо опасных инфекций, вскрывают в специальных помещениях с соблюдением особых мер предосторожности.

^ 4этап ЭСМИ. Идентификация выделенной культуры и заключение по результатам исследования.

Оценка ЭСМИ.

Достоинства метода:

  • относительно высокая чувствительность;

  • высокая специфичность;

  • ранний метод исследования.

Недостатки метода:

  • длительность;

  • не всегда доступен;

  • опасность инфицирования;

  • дорогостоящий.

^ Таблица 17

Схема экспериментального метода исследования


Цели

  1. Выделение и идентификация чистой культуры микроорганизмов.

  1. Определение вирулентности и патогенности микроорганизмов.

  1. Индикация и идентификация экзотоксинов.

  1. Изучение патогенеза инфекционных болезней при воспроизведении экспериментальных инфекций.

  1. Производство биологических препаратов.

  1. Проверка безвредности и эффективности лечебных препаратов.

  1. Лабораторные животные - доноры крови для приготовления кровяных питательных сред.

Этапы


1 - взятие и обработка материала

2 – выбор и заражение

лабораторного животного

  • здоровое и чувствительное

  • мыши, крысы, кролики, бараны, лошади

  • беспородные и линейные

  • гнотобионты и гнотофоры

методы заражения:

  • накожный

  • внутрикожный

  • подкожный

  • внутримышечный

  • внутривенный

  • пероральный

  • интраназальный

  • внутриполостной

  • внутриорганный

3

прижизненно

  • наблюдение

  • взятие материала для БЛМИ и СЛМИ

  • постановка кожно-аллергических проб

гибель (умерщвление) животного,

вскрытие

  • патологоанатомическая картина

  • патоморфологическая картина

  • препараты-отпечатки

  • взятие материала для БЛМИ и СЛМИ

4 – идентификация и заключение

Оценка


достоинства


  • относительно высокая чувствительность

  • высокая специфичность

  • ранний метод исследования

недостатки


  • длительность

  • не всегда доступен

  • опасность инфицирования

  • дорогостоящий


^ ОБЩИЕ ПРИНЦИПЫ

СЕРОЛОГИЧЕСКОГО МЕТОДА ИССЛЕДОВАНИЯ

Серологический (от лат. serum - сыворотка, logos – учение) метод исследования (СЛМИ) – метод, в основе которого лежит реакция специфического взаимодействия антигенов (Аг) и антител (Ат).

Используя этот метод, можно определить неизвестное Ат при взаимодействии с известным Аг, и наоборот.

^ Основные понятия.

Диагностическая сыворотка (известное Ат) – иммунная сыворотка, содержащая Ат известной специфичности в известном титре. Диагностические сыворотки получают путём иммунизации животных соответствующим Аг. В последнее время в этом качестве всё чаще используют моноклональные Ат.

Диагностикум (известный Аг) - взвесь в физрастворе известных микроорганизмов или извлечённых из них Аг. В качестве неспецифического диагностикума могут быть использованы перекрёстно реагирующие Аг.

Титр сыворотки – максимальное разведение сыворотки (или минимальное её количество), в котором обнаруживаются Ат.

Диагностический титр – разведение сыворотки, в котором реакция положительна только у больных и отрицательна у здоровых. Для одной инфекции диагностический титр каждой серологической реакции свой.

Парные сыворотки – сыворотки одного обследуемого, взятые с определённым интервалом для изучения динамики титра Ат. Первую сыворотку берут в начале заболевания, в острую стадию, вторую – при острых инфекциях – через 7–14 дней, при хронических инфекциях – через месяц.

Серонегативный период – стадия заболевания, в которой специфические Ат ещё не обнаруживаются, несмотря на наличие возбудителя («серологическое окно»).

Серопозитивный период – стадия заболевания, в которой специфические Ат обнаруживаются.

Сероконверсия – переход серонегативности в серопозитивность.

^ Задачи СЛМИ:

  1. серодиагностика инфекционных заболеваний, основанная на обнаружении в сыворотке Ат; диагностическое значение имеют:

а) обнаружение Ат в диагностическом титре;

б) оценка динамики титра Ат. При установлении свежего случая заболевания диагностическое значение имеет 4-кратное нарастание титра Ат в парных сыворотках. Однако при наличии дополнительных клинических и эпидемиологических данных для установления диагноза достаточно 2-кратного нарастания титра Ат.

в) определение классоспецифичности антител чётко характеризует этапы инфекционного процесса, а также может служить косвенным прогностическим критерием. Так, выявление специфических IgM свидетельствует о свежем случае заболевания (инфекционная реакция). Выявление специфических IgG – анамнестическая реакция: постинфекционная (титр антител выше) или поствакцинальная (титр антител ниже).

  1. серодиагностика аутоиммунных заболеваний и аллергических реакции немедленного типа, основанная на обнаружении в сыворотке Ат;

  2. серодиагностика заболеваний, основанная на обнаружении Аг в биологических жидкостях или тканях:

а) экспресс-диагностика инфекционных заболеваний при обнаружении Аг микроорганизмов (например, диагностика хламидиозов, микоплазмозов, уреаплазмозов методом РИФ).

Количественное определение Аг микроорганизмов в динамике инфекционного процесса служит критерием эффективности проводимой антимикробной терапии.

б) диагностика опухолей при обнаружении в сыворотке опухолеассоциированных Аг (например, ПСА (простатспецифического Аг) при раке простаты).

  1. определение активности гуморального поствакцинального индивидуального или коллективного иммунитета;

  2. определение титров диагностических, лечебных и профилактических сывороток;

  3. определение групп крови, подбор доноров при пересадке органов, определение гормонов (щитовидной железы, половых);

  4. определение фальсификации пищевых продуктов, судмедэкспертиза на основании определения видовой принадлежности антигенов.

^ Материал для серологического исследования:

  1. сыворотки, полученные из венозной крови, взятой в утреннее время, натощак (между последним приемом пищи и взятием крови должно пройти не менее 12 часов). За сутки до взятия крови необходимо исключить жирную пищу и прием алкоголя, за 1 час – курение. Необходимо исключить повышенные психоэмоциональные и физические нагрузки;

  2. чистые культуры микроорганизмов, выделенные от больных или из объектов внешней среды;

  3. патологический материал от больных (например, соскобы эпителия, пунктаты, биоптаты, секционный материал) для экспресс-обнаружения Аг микроорганизмов.

Оценка СЛМИ.

I. Достоинства СЛМИ:

  1. высокая специфичность определяется способностью Аг взаимодействовать только с гомологичными Ат. Самая низкая специфичность – у РА.

  2. чувствительность – минимальное количество Аг или Ат, которое выявляет реакция; хотя чувствительность зависит от метода исследования: минимальная – у РА (выявляет 100 мг Ат в 1 л), максимальная – у ИФА и РИА (выявляют до 0,00001 мг Ат в 1 л). В целом чувствительность достаточно высокая, но не абсолютная (95–98% в самых чувствительных реакциях).

  3. ранний метод исследования при выявлении Аг, как микробных (обычно в РИФ), так и опухолеассоциированных (обычно в ИФА).

  4. возможность проведения ретроспективных эпидемиологических исследований на основании обнаружения Ат. Ат циркулируют в организме относительно долго после контакта организма с возбудителем. Это особенно важно при ретроспективной диагностике субклинических форм заболеваний.

  5. быстрота получения результатов. Скорость получения результатов зависит от используемой реакции. Так, при постановке РА на стекле результат может быть получен через 5 минут, при постановке РПГА – через 2 часа, РСК, ИФА, РИА – через 4 часа, РП в геле – через 24 часа.

^ II. Недостатки СЛМИ:

  1. поздний метод исследования при выявлении Ат: при острых инфекционных заболеваниях обнаружение Ат часто бывает ретроспективным потому, что Ат обычно появляются не ранее 7 дня от начала заболевания, а к этому времени острое заболевание может закончиться.

  2. наличие ложных результатов:

А. Ложноположительных (ЛПР): острых (сохраняются до 6 месяцев) или хронических (наблюдаются постоянно).

^ Причины ЛПР:

а) низкое качество используемой тест-системы, её недостаточная специфичность;

б) наличие сопутствующих заболеваний и состояний:

для острых ЛПР:

– изменение гормонального фона (во время менстуации, за 2 недели до родов, в течение 3 недель после родов);

– другие острые инфекции;

– изменения липидного обмена при отравлениях, приёме алкоголя, жирной пищи, некоторых лекарств;

– при обширных травмах (открытые переломы, сотрясение мозга);

– при инфаркте миокарда (лёгкого).

для хронических ЛПР:

– нарушение обмена веществ;

– другие хронические инфекции;

– аллергические и аутоиммунные заболевания;

– хронические интоксикации;

– злокачественные опухоли.

в) технические погрешности в работе лаборанта (перепутывание образцов).

Б. Ложноотрицательных (ЛОР).

Причины ЛОР:

а) ранняя стадия заболевания, когда Ат не вырабатываются (серонегативный период) или титр их низкий, неулавливаемый данной тест-системой;

б) особенности течения заболевания:

– снижение реактивности организма при тяжёлом течении заболевания;

– раннее назначение этиотропного или специфического лечения (любое лечение мешает естеству);

– физиологическое иммунодефицитное состояние: у престарелых людей, а также на этапе становления иммунной системы у детей до 2 лет;

– при микробоносительстве;

в) низкая чувствительность используемой тест-системы;

г) технические погрешности в работе лаборанта (перепутывание образцов).

  1. потенциальная опасность инфицирования всегда существует при работе с биологическим материалом.


Общие закономерности серологических реакций.

  1. Ставятся in vitro, за исключением анафилаксии.

  2. Проявляются при иммунологическом соответствии (гомологичности) Аг и Ат и присутствии их в эквивалентных соотношениях (недостаток или избыток компонентов препятствует образованию иммунных комплексов). Протекают в оптимальных температурных условиях (0–370С) и рН среды, только в присутствии электролита (0,85% раствор NaCl).

  3. Различают двухфазные и однофазные серологические реакции.

^ Двухфазные протекают в 2 фазы.

А. Специфическая фаза: взаимодействие Аг с Ат. Участок молекулы Аг, взаимодействующий с Ат – эпитоп, соответствующий участок молекулы АТ - активный центр (паратоп). Сила связывания Аг и Ат зависит от комплементарности (соответствия по принципу ключ-замок) Аг и Ат. Среди Ат существует большое разнообразие по структуре активного центра, одни Ат точно комплементарны Аг, другие – неполностью.

В связывании Аг с активным центром Ат участвуют нековалентные связи за счёт пространственной комплементарности, которые обеспечиваются электростатическим, вандерваальсовым и гидрофобным взаимодействием и водородные связи.

Взаимодействие нарастает по мере уменьшения расстояния между Аг и Ат. Прочность соединения активного центра Ат и Аг детерминанты, обусловленная их комплементарностью – аффинитет. У поливалентных Ат аффинитет выше. Суммарная сила взаимодействия поливалентного Ат с полидетерминантным антигеном – авидность.

Специфическая фаза осуществляется быстро, взаимодействие происходит при рН 7,0 и определенной температуре. Образуется прочное соединение, но ковалентные связи не участвуют, поэтому оно обратимо: при изменении рН, высокой концентрации солей наступает диссоциация комплекса Аг-Ат.

^ Б. Неспецифическая фаза: укрупнение и образование видимого комплекса Аг-Ат. При приближении поверхности эпитопа и паратопа на расстояние в десятые доли нм во взаимодействие вступают межмолекулярные силы, обладающие высокой энергией.

Неспецифическая фаза развивается медленно, осуществляется в присутствии электролита, визуальный эффект зависит от свойств Аг:

– если Аг корпускулярный нерастворимый (бактерии, эритроциты), наступает феномен агглютинации (зёрна, хлопья);

– если Аг молекулярный растворимый, наблюдается феномен преципитации (помутнения);

– если Аг клеточный, наблюдается феномен лизиса клетки;

– если в качестве Аг выступают токсины или вирусы, наблюдается феномен нейтрализации.

Регистрация однофазных взаимодействий требует введения в систему дополнительной метки, позволяющей фиксировать связывание Аг и Ат. Методы визуализации однофазных взаимодействий:

  1. сорбция одного компонента реакции (Аг или Ат) на носителе. В качестве носителя антигенов могут быть использованы эритроциты – РПГА или частицы латекса – РПЛА;

  2. использование гемолитической системы, состоящей из равных объёмов Аг и Ат, для определения комплементсвязывающих антител в РСК;

  3. использование флюорохромов – РИФ;

  4. использование ферментов (пероксидаза, β-глюкуронидаза) – ИФА;

  5. комбинированное применение различных принципов и реакций: после электрофоретического разделения белков исследуемого образца электрофореграмма переносится на нитроцеллюлозную пластинку и далее обрабатывается как в ИФА – иммуноблотинг;

  6. использование радиоактивных изотопов (йод, хром) – РИА;

  7. использование электронов или морфологически различимых частиц: золота, осмия, ферритина (белка селезенки), гемоцианина (белка гемолимфы молюска), небольших вирусов при иммунной электронной микроскопии и в иммуногистохимических исследованиях. Ат, присоединенные к электронам или морфологически различимым частицам становятся видимыми в электронном микроскопе как небольшие плотные точки;

  8. использование системы биотин-авидин в тест-системах ИФА 4-го проколения для скрининга ВИЧ-инфекции. Биотином метят моноклональные Ат к Аг ВИЧ. Молекулы авидина (гликопротеина яичного белка) обладают высоким сродством к небольшим молекулам витамина биотина (молекула авидина связывает 4 молекулы биотина). Поэтому Ат, конъюгированные с биотином, обнаруживают по взаимодействию с авидином;

  9. ингибирование специфическими Ат феномена гемагглютинации (склеивания эритроцитов гемагглютининами вируса) – РТГА;

  10. ингибирование специфическими Ат феномена гемадсорбции (способности вирусов, имеющих гемагглютинины, адсорбировать эритроциты) – РТГАдс;

  11. нейтрализации вирусной активности специфическими Ат в культуре клеток или на лабораторных животных – РН. В случае гомологичности Ат и вирусных Аг культура клеток (или лабораторное животное) сохраняет жизнеспособность.

  1. Все серологические реакции отличаются по проявлениям (регистрируемому эффекту) и технике постановки.

Подробно серологические реакции изучаются в курсе иммунологии.

1   2   3   4   5   6   7   8   9   10

Ваша оценка этого документа будет первой.
Ваша оценка:

Похожие:

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк 616. 3-092 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк 611. 831. 81 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк 616-092. 19-097 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк 616. 36-002-092 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк 616. 981. 711-036. 22-084 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск, бгму 2010

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2009 удк 616. 8-092 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2009 удк 616-056. 3-071 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск бгму 2008 Удк 613. 2-099-057. 3 (075. 8)

Учебно-методическое пособие Минск бгму 2010 удк icon Учебно-методическое пособие Минск 2010 удк 616. 379-008. 64: 618. 2(075. 9)

Разместите кнопку на своём сайте:
Медицина


База данных защищена авторским правом ©MedZnate 2000-2016
allo, dekanat, ansya, kenam
обратиться к администрации | правообладателям | пользователям
Документы